BD، 560747، لوحة فحص علامات سطح الخلية البشرية BD Lyoplate™

الوضع التنظيمي: للاستخدام البحثي فقط
RRID: AB_1953343
الوصف: تحتوي لوحة فحص علامات سطح الخلية البشرية BD Lyoplate™ على 242 جسمًا مضادًا أحادي النسيلة مُنقّى لعلامات سطح الخلية. كما تحتوي اللوحة على ضوابط من نوعي الفأر والجرذ لتقييم الخلفية الخاصة بكل نوع. يمكن استخدام هذه اللوحة لفحص خطوط الخلايا، أو الخلايا الأولية، أو الأنسجة، وهي متوافقة مع منصات تقنيات قياس التدفق الخلوي والتصوير الحيوي. تحتوي اللوحة على ثلاث (3) لوحات ذات 96 بئرًا، يحتوي كل بئر منها على 2.75 ميكروغرام من الجسم المضاد، وهو ما يكفي لخمسة اختبارات (0.5 ميكروغرام/اختبار)، بالإضافة إلى أجسام مضادة ثانوية من نوع Ig مضاد للفأر ومضاد للجرذ مُقترنة بـ AlexaFluor® 647. يتوافق هذا المنتج مع الخلايا التي تُعبّر عن جينات مُبلِّغة فلورية، مثل البروتين الفلوري الأخضر (GFP)، ويمكن استخدامه مع أجسام مضادة إضافية تتعرف على جزيئات سطح الخلية والجزيئات داخل الخلوية. يمكن متابعة النتائج الإيجابية من الفحوصات باستخدام الأجسام المضادة النقية أو المرتبطة بصبغة فلورية، والتي توفرها شركة BD Biosciences. للوصول إلى هذا المحتوى، يمكنك البحث عن اسم المستنسخ و/أو اسم النوعية على موقعنا الإلكتروني: http://www.bdbiosciences.com. المكون 51-9006585AK - لوحة علامات سطح الخلية البشرية - الجزء أ: • لوحة علامات سطح الخلية البشرية المجففة بالتجميد 1 (واحدة من كل نوع) • لوحة علامات سطح الخلية البشرية المجففة بالتجميد 2 (واحدة من كل نوع) • لوحة علامات سطح الخلية البشرية المجففة بالتجميد 3 (واحدة من كل نوع). • تُحفظ اللوحات غير المفتوحة في درجة حرارة الغرفة (18-25 درجة مئوية). • تُجفف الأجسام المضادة بالتجميد في محلول مائي منظم يحتوي على ألبومين المصل البقري (BSA) و≤ 0.09% أزيد الصوديوم. المكون 51-9006588BK - لوحة فحص علامات سطح الخلية البشرية - الجزء ب · ألكسا فلور® 647 مضاد الغلوبولين المناعي للفأر (1.8 مل) · ألكسا فلور® 647 مضاد الغلوبولين المناعي للجرذ (0.6 مل) · يُحفظ الجسم المضاد الثانوي في درجة حرارة 4 درجات مئوية. · يُقدم الجسم المضاد الثانوي في محلول مائي مُخفف يحتوي على ≤ 0.09% أزيد الصوديوم. من المهم ملاحظة أن الأجسام المضادة الموجودة في هذه اللوحة قد لا تتعرف على جميع الأشكال المتغايرة لكل علامة من علامات سطح الخلية. بالإضافة إلى ذلك، يمكن أن تتصرف مستنسخات الأجسام المضادة بشكل مختلف على أنواع الخلايا اعتمادًا على توافر الحواتم الموجودة، أي أن بعض الحواتم يمكن حجبها بواسطة تعديلات ما بعد الترجمة. قد تكون النتائج التي تحصل عليها في هذا الفحص ذات صلة فقط بمستنسخات الأجسام المضادة التي تم اختبارها.
إجراءات الفحص الموصى بها: تعليمات هامة قبل البدء: • لا تُخرج الصفائح من أكياس الرقائق المعدنية إلا عند استخدامها. يُعد كيس الرقائق المعدنية الحاجز الأساسي للرطوبة. بمجرد إخراج الصفائح من أكياس الرقائق المعدنية، يجب إعادة تكوين الأجسام المضادة. • قبل إزالة غطاء الرقائق المعدنية، تأكد من تدوير الصفائح، وتوخَّ الحذر عند إزالة الغطاء. يُرجى مراجعة قسم "إعادة تكوين الجسم المضاد" أدناه لمزيد من التفاصيل. • بعد إزالة غطاء الرقائق المعدنية وقبل إعادة التكوين، تجنب وضع الغطاء البلاستيكي أو أي غطاء آخر على الصفائح، أو إعادة إغلاقها بشريط لاصق. في كلتا الحالتين، قد تتسبب الشحنات الساكنة الناتجة في انفصال الأجسام المضادة وخروجها من الآبار. • قد تلاحظ أن مظهر الأجسام المضادة المجففة بالتجميد ليس متطابقًا. هذا أمر طبيعي ولن يؤثر على أداء الأجسام المضادة. • بعض مؤشرات سطح الخلية حساسة للهضم الأنزيمي. استخدم، كلما أمكن، محلولًا غير أنزيمي لفصل الخلايا لتحضيرها لتحليل التدفق الخلوي. لفصل الخلايا باستخدام الإنزيمات، نوصي باستخدام Accutase™ (رقم المنتج 561527). تأكد من أن الخلايا معلقة في معلق خلوي أحادي. يمكن تقليل تكتل الخلايا عن طريق معالجة الخلايا بإنزيم DNase وإضافة EDTA إلى محلول التلوين BD Pharmingen™ (FBS) (رقم المنتج 554656). قد تُنتج بعض الأجسام المضادة لعلامات سطح الخلية نتائج خاطئة (إيجابية وسلبية خاطئة) على الخلايا المثبتة. إذا لزم التثبيت، فإن تلوين الخلايا الحية ثم تثبيتها قبل التحليل يُساعد في تقليل هذه النتائج الخاطئة. معظم الأجسام المضادة في هذه المجموعة مُستخلصة من الفئران، بينما بعضها مُستخلص من الجرذان. توجد هذه الأجسام المضادة في اللوحة 3 في الآبار F1-F12 وG1 وG1-G4 (الآبار الحمراء على خريطة اللوحة 3). تأكد من استخدام الجسم المضاد الثانوي المضاد للغلوبولين المناعي للجرذان مع الخلايا المُلوّنة بهذه الأجسام المضادة. نوصي بتقييم التلوين الخلفي على الخلايا عن طريق معايرة الأجسام المضادة الثانوية Alexa Fluor® 647 قبل إجراء الفحص الكامل. تم توفير كمية زائدة من الأجسام المضادة الثانوية. بناءً على أنواع الخلايا المختبرة، نوصي باستخدام الأجسام المضادة الثانوية المضادة للفأر والجرذ بتركيز 1.25 ميكروغرام/مل (100 ميكرولتر لكل بئر). نوصي باستخدام الضوابط السلبية التالية: (1) خلايا غير ملونة، (2) خلايا + جسم مضاد ثانوي مضاد للفأر، و(3) خلايا + جسم مضاد ثانوي مضاد للجرذ. تم توفير آبار فارغة (مُصنفة باسم "محلول منظم" على خرائط اللوحة) لهذا الغرض. لتحليل التدفق الخلوي، نوصي بتشغيل من 500,000 إلى 1,000,000 خلية لكل بئر للحصول على أفضل النتائج. مع ذلك، فقد نجحنا في تشغيل 250,000 خلية فقط لكل بئر. لتحليل التدفق الخلوي، نوصي باستخدام جهاز تحميل لوحات HTS ذي 96 بئراً. مع ذلك، نجحنا أيضًا في نقل الخلايا المصبوغة من صفائح 96 بئرًا إلى أنابيب BD Falcon™ ذات القاع المستدير 12 × 75 مم (رقم المنتج 352008) باستخدام مُحمِّل يدوي لتشغيل العينات. إعادة تكوين الأجسام المضادة: بعد إخراج صفائح BD Lyoplate Human Cell Surface Marker Screening Panel من الأكياس المعدنية، تُوضع في جهاز الطرد المركزي بسرعة 300 × g لمدة 5 دقائق. تُثبَّت الصفيحة بإحكام على طاولة العمل، ثم تُزال الرقاقة المعدنية برفق بدءًا من أحد طرفيها، مع سحبها عبر الصفيحة لإزالتها تمامًا. بمجرد إزالة الرقاقة المعدنية، يجب إعادة تكوين جميع الأجسام المضادة المجففة بالتجميد فورًا. لا تُعِد غطاء الصفيحة قبل إعادة التكوين. باستخدام ماصة متعددة القنوات، تُعاد تكوين الأجسام المضادة المجففة بالتجميد في 110 ميكرولتر من محلول PBS معقم بتركيز 1X. ينتج عن ذلك محلول أجسام مضادة يحتوي على خمسة اختبارات (20 ميكرولتر/اختبار). تأكد من استخدام رؤوس ماصة جديدة لكل صف لمنع انتقال التلوث بين الآبار. اترك الأجسام المضادة لتتفاعل لمدة خمس دقائق في درجة حرارة الغرفة. خزّن الأجسام المضادة المُعاد تكوينها في درجة حرارة 4 درجات مئوية حتى يتم تحضير الخلايا للتجارب. يمكن تخزين الأجسام المضادة المُعاد تكوينها في أطباق ذات أغطية في درجة حرارة 4 درجات مئوية لمدة 10 أيام على الأقل. أغلق حواف الطبق (مع وضع الغطاء) بغشاء مختبري من نوع Parafilm "M"® لمنع فقدان الأجسام المضادة المُعاد تكوينها بسبب التبخر. فحص الخلايا باستخدام قياس التدفق الخلوي: 1. حضّر معلقًا خلويًا أحاديًا من الخلايا الحية من سلالة خلوية أو نسيج أو مزرعة ثلاثية الأبعاد. بالنسبة لسلالات الخلايا الملتصقة، نوصي باستخدام إنزيم خفيف مثل Accutase™ أو محلول تفكيك غير إنزيمي. 2. اغسل الخلايا في حجمين إلى أربعة أضعاف حجمها من محلول PBS بتركيز 1X. قم بالطرد المركزي عند 300 × g لمدة 5 دقائق. 3. أزل أي تكتلات بتمرير الخلايا عبر مصفاة خلايا BD Falcon™ بمسام 40 أو 70 ميكرومتر (رقم المنتج 352340، رقم المنتج 352350). 4. حدد تركيز الخلايا وعددها الإجمالي. إذا كنت تقوم بفصل الأنسجة أو زراعة ثلاثية الأبعاد، فنوصي بمعالجة الخلايا المفردة بإنزيم DNase لمنع تكتل الخلايا. أعد تعليق الخلايا في وسط النمو الموصى به أو محلول PBS بتركيز 1X مع الكالسيوم والمغنيسيوم، مع إضافة 100 وحدة/مل من إنزيم DNase بتركيز 10 ملايين خلية/مل. حضّن لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. 5. اغسل الخلايا بضعفين إلى أربعة أضعاف حجمها من محلول PBS بتركيز 1X. قم بالطرد المركزي عند 300 × g لمدة 5 دقائق. 6. حضّر 275 مل من محلول BD Pharmingen Stain Buffer (FBS) مع إضافة 5 ملي مول من EDTA (التركيز النهائي) للخطوات اللاحقة. ٧. أعد تعليق العينة في محلول التلوين BD Pharmingen Stain Buffer + EDTA. ستحتاج إلى ما بين ١٣٥ و ٢٧٠ مليون خلية (في حجم إجمالي يبلغ حوالي ٢٧ مل) لملء الآبار الحاوية على الأجسام المضادة في الصفائح الثلاث (٥٠٠,٠٠٠ - ١٠٠,٠٠٠ خلية لكل بئر). يعتمد الحد الأدنى لعدد الخلايا في كل بئر على جهاز قياس التدفق الخلوي و/أو فقدان الخلايا أثناء الغسل. لقد نجحنا في تشغيل ما لا يقل عن ٢٥٠,٠٠٠ خلية لكل بئر. ٨. ضع علامات على ثلاث صفائح BD Falcon™ ذات قاع مستدير و ٩٦ بئرًا (رقم المنتج ٣٥٣٩١٠) وهي الصفائح ١ و ٢ و ٣ لعينتك. ٩. باستخدام ماصة متعددة القنوات، خذ ١٠٠ ميكرولتر من محلول الخلايا وضعها في الآبار المطلوبة في الصفائح الثلاث ذات القاع المستدير و ٩٦ بئرًا. أ. إذا كان لديك عدد محدود من الخلايا، يمكنك حذف الآبار التي تحتوي على المحلول المنظم فقط من اللوحة 3. يرجى الرجوع إلى خريطة اللوحة 3 لتحديد الآبار التي يمكن استبعادها مع مراعاة الخلايا غير المصبوغة وعناصر التحكم بالأجسام المضادة الثانوية. 10. باستخدام ماصة متعددة القنوات، اسحب المحلول لأعلى ولأسفل 2-3 مرات لخلط الجسم المضاد المُعاد تكوينه من الصف الأول من الآبار في لوحة فحص BD Lyoplate 1 بشكل كامل. أضف 20 ميكرولتر إلى الخلايا في الآبار المقابلة في لوحة العينة 1. استمر في إضافة الجسم المضاد المُعاد تكوينه إلى آبار العينة المقابلة لجميع الآبار المتبقية في كل لوحة. استخدم رؤوس ماصة جديدة لكل بئر. حضّن على الجليد لمدة 20-30 دقيقة. 11. للغسل، أضف 100 ميكرولتر من محلول BD Pharmingen Stain Buffer + EDTA إلى كل بئر. قم بالطرد المركزي عند 300 × g لمدة 5 دقائق. ١٢. أزل السائل الطافي بعناية واغسل الخلايا بـ ٢٠٠ ميكرولتر إضافية من محلول التلوين BD Pharmingen Stain Buffer + EDTA. ثم قم بالطرد المركزي عند ٣٠٠ × g لمدة ٥ دقائق. ١٣. خلال خطوة الطرد المركزي للغسلة النهائية، خفف الجسم المضاد الثانوي بنسبة ١:٢٠٠ (١.٢٥ ميكروغرام/مل) في محلول التلوين BD Pharmingen Stain Buffer + EDTA. ستحتاج إلى حوالي ٢٦ مل من الجسم المضاد الثانوي المخفف المضاد للفأر وحوالي ٣ مل من الجسم المضاد الثانوي المخفف المضاد للجرذ. ١٤. أزل السائل الطافي وضع ١٠٠ ميكرولتر من الجسم المضاد الثانوي المناسب مباشرة على الخلايا في كل بئر، ثم حضّنها لمدة ٢٠-٣٠ دقيقة على الجليد في الظلام. أ. أضف الجسم المضاد الثانوي المضاد للفأر إلى جميع آبار أول صفيحتين من صفائح العينات ذات القاع المستدير ٩٦ بئراً. بالنسبة للوحة العينات رقم 3، يُرجى الرجوع إلى مخططات اللوحة وإضافة الأجسام المضادة الثانوية المضادة للفأر إلى آبار العينات المناسبة (الآبار البيضاء: جميع الآبار في الصفوف A وB وC، والآبار من D1 إلى D5 ومن E1 إلى E5)، وإضافة الأجسام المضادة الثانوية المضادة للجرذان إلى الآبار المناسبة (الآبار الحمراء: الآبار من F1 إلى F12 ومن G1 إلى G4). ب. استخدم الآبار المتبقية في لوحة العينات رقم 3 التي لا تحتوي على أجسام مضادة (الآبار الرمادية) لإعداد خلايا غير مصبوغة وعينات تحكم بالأجسام المضادة الثانوية المضادة للجرذان. 15. للغسل، أضف 100 ميكرولتر من محلول التلوين BD Pharmingen Stain Buffer + EDTA إلى كل بئر. قم بالطرد المركزي عند 300 × g لمدة 5 دقائق. 16. أزل السائل الطافي واغسل الخلايا بـ 200 ميكرولتر إضافية من محلول التلوين BD Pharmingen Stain Buffer + EDTA. قم بالطرد المركزي عند 300 × g لمدة 5 دقائق. ١٧. في هذه المرحلة، قد ترغب في تثبيت الخلايا قبل التحليل. للتثبيت، أزل السائل الطافي وأضف ١٠٠ ميكرولتر من محلول بارافورمالدهيد ٤٪ في محلول فوسفات ملحي (PBS) بتركيز ١X أو محلول تثبيت BD Cytofix™ (رقم المنتج ٥٥٤٦٥٥) لكل بئر، ثم حضّن لمدة ١٠ دقائق. إذا كنت لا ترغب في تثبيت الخلايا، فانتقل إلى الخطوة ١٩. ١٨. اغسل الخلايا مرتين بمحلول فوسفات ملحي (PBS) بتركيز ١X. ثم قم بالطرد المركزي عند ٣٠٠ × g لمدة ٥ دقائق. ١٩. أزل السائل الطافي وأعد تعليق الخلايا في ١٥٠ ميكرولتر من محلول تلوين BD Pharmingen + EDTA لكل بئر. حلل عيناتك باستخدام جهاز قياس التدفق الخلوي. نوصي بجمع ١٠٠٠٠ حدث على الأقل لكل بئر. أثناء قراءة اللوحة الأولى، خزّن اللوحات الأخرى على الثلج في مكان مظلم. ٢٠. تتوفر قوالب التحليل على الموقع الإلكتروني bdbiosciences.com/resources/stemcell ضمن قسم الأدوات. فحص الخلايا بالتصوير الحيوي: ١. ازرع الخلايا في وسط زراعة مناسب بكثافة خلوية ملائمة في صفيحة تصوير BD Falcon™ ذات ٩٦ بئرًا (رقم المنتج ٣٥٣٢١٩)، واستمر في زراعة الخلايا حتى تصل إلى الكثافة المناسبة. نوصي بنسبة تغطية تتراوح بين ٧٠ و٨٠٪ لفحوصات التصوير. ٢. يجب إجراء تلوين سطح صفيحة BD Lyoplate على خلايا حية، حيث أن التثبيت قد يُسبب تشوهات (إشارات إيجابية وسلبية خاطئة) مع بعض مؤشرات سطح الخلية. في الحالات التي يجب فيها تثبيت الخلايا قبل التلوين، نوصي بتأكيد أي نتائج إيجابية باستخدام عينة حية ملونة بالتصوير أو قياس التدفق الخلوي. ٣. باستخدام ماصة متعددة القنوات، أضف ٢٠ ميكرولتر من كل جسم مضاد مُعاد تكوينه إلى الآبار المقابلة في صفائح العينات الخاصة بك، ثم حضّنها على الجليد لمدة ٢٠-٣٠ دقيقة. قم بتلوين الخلايا مباشرةً في 50 إلى 100 ميكرولتر من وسط النمو الطازج. في حال تلوين الخلايا المثبتة، قم بتلوينها في محلول فوسفات ملحي (PBS) بتركيز 1X. 4. اغسل الخلايا مرتين في 100 ميكرولتر من محلول فوسفات ملحي (PBS) بتركيز 1X. 5. خفف الأجسام المضادة الثانوية بنسبة 1:100 (2.5 ميكروغرام/مل) في وسط النمو، ثم ضع 100 ميكرولتر من الجسم المضاد الثانوي المناسب مباشرةً على الخلايا في كل بئر من آبار لوحات العينات، واحضنها لمدة 20-30 دقيقة على الجليد في الظلام. ستحتاج إلى حوالي 26 مل من الجسم المضاد الثانوي المخفف المضاد للفأر، وحوالي 3 مل من الجسم المضاد الثانوي المخفف المضاد للجرذ. أ. أضف الجسم المضاد الثانوي المضاد للفأر إلى جميع آبار أول لوحتي عينات تصوير مكونتين من 96 بئراً. بالنسبة للوحة العينات رقم 3، يُرجى الرجوع إلى مخططات اللوحة وإضافة الأجسام المضادة الثانوية المضادة للفأر إلى آبار العينات المناسبة (الآبار البيضاء: جميع الآبار في الصفوف A وB وC، والآبار من D1 إلى D5 ومن E1 إلى E5)، وإضافة الأجسام المضادة الثانوية المضادة للجرذان إلى الآبار المناسبة (الآبار الحمراء: الآبار من F1 إلى F12 ومن G1 إلى G4). ب. استخدم الآبار المتبقية في لوحة العينات رقم 3 التي لا تحتوي على أجسام مضادة (الآبار الرمادية) لإعداد خلايا غير مصبوغة وعينات تحكم باستخدام الأجسام المضادة الثانوية المضادة للجرذان. 6. أزل السائل الطافي واغسل الخلايا مرتين باستخدام 100 ميكرولتر من محلول الفوسفات الملحي (PBS) بتركيز 1X. 7. في هذه المرحلة، قد ترغب في تثبيت الخلايا قبل التحليل. للتثبيت، أزل السائل الطافي وأضف 100 ميكرولتر من محلول بارافورمالدهيد بتركيز 4% في محلول الفوسفات الملحي (PBS) بتركيز 1X أو محلول تثبيت BD Cytofix لكل بئر، ثم حضّن لمدة 10 دقائق. إذا كنت لا ترغب في تثبيت الخلايا، فانتقل إلى الخطوة 9. 8. أزل المُثبِّت من الآبار، واغسلها مرتين باستخدام 100 ميكرولتر من محلول الفوسفات الملحي (PBS) بتركيز 1X. 9. أضف 100 ميكرولتر من محلول الفوسفات الملحي (PBS) بتركيز 1X مع صبغة حمض نووي قابلة للنفاذ الخلوي، مثل محلول هوكست 33342 (رقم المنتج 561908). 10. حلِّل عيناتك باستخدام جهاز تصوير حيوي عالي المحتوى. وصف المنتجات المصاحبة المقترحة - الحجم - رقم الكتالوج: محلول تلوين BD Pharmingen™ (FBS) - 500 مل - 554656، محلول تثبيت BD Cytofix™ - 100 مل - 554655، BD Accutase™ - 100 مل - 561527، محلول BD Pharmingen™ Hoechst 33342 - 1 ملغم/مل - 561908. وصف المنتجات ذات الصلة - الحجم - رقم الكتالوج: صفائح BD Falcon™ ذات 96 بئرًا، سوداء/شفافة مع غطاء، لتحليلات التصوير عالية المحتوى - 32/كرتونة - 353219، صفائح BD Falcon™ ذات 96 بئرًا، قاع مستدير، بدون غطاء، لتحليل التدفق الخلوي عالي الإنتاجية - 50/كرتونة - 353910، أغطية BD Falcon™ منخفضة التبخر لصفائح BD Falcon™ ذات 96 بئرًا صفائح دقيقة - 50/علبة - 353071 تحذيرات واحتياطات: تحتوي لوحة فحص علامات سطح الخلية البشرية (الجزء أ)، التي تحتوي على الصفائح الدقيقة 1 و2 و3، على أزيد الصوديوم. يجب على الباحثين ملاحظة أن بيانات المخاطر والسلامة التالية قابلة للتطبيق: رموز الخطر - مكونات تحديد الخطر في الملصق. ضار عند الاستنشاق - أزيد الصوديوم Xn. عبارات المخاطر. عبارات السلامة. ضار عند ملامسة الجلد 36. ارتدِ ملابس واقية مناسبة 22. ضار عند البلع 60. يجب التخلص من هذه المادة وعبوتها كنفايات خطرة. إظهار أقل
إشعارات المنتج: Alexa Fluor® علامة تجارية مسجلة لشركة Life Technologies Corporation. يُقدَّم هذا المنتج بموجب ترخيص ملكية فكرية بين شركة Life Technologies Corporation وشركة BD Businesses. يمنح شراء هذا المنتج المشتري حقًا غير قابل للتحويل لاستخدام الكمية المشتراة من المنتج ومكوناته في الأبحاث التي يجريها المشتري (سواء كان المشتري جهة أكاديمية أو ربحية). لا يجوز للمشتري بيع أو نقل (أ) هذا المنتج، أو (ب) مكوناته، أو (ج) المواد المصنعة باستخدام هذا المنتج أو مكوناته إلى طرف ثالث، أو استخدام هذا المنتج أو مكوناته أو المواد المصنعة باستخدام هذا المنتج أو مكوناته لأغراض تجارية. تشمل الأغراض التجارية أي نشاط يقوم به أي طرف مقابل عوض، وقد تشمل، على سبيل المثال لا الحصر: (1) استخدام المنتج أو مكوناته في التصنيع؛ (2) استخدام المنتج أو مكوناته لتقديم خدمة أو معلومات أو بيانات؛ (3) استخدام المنتج أو مكوناته لأغراض علاجية أو تشخيصية أو وقائية. أو (4) إعادة بيع المنتج أو مكوناته، سواءً أُعيد بيعها لأغراض البحث أم لا. للحصول على معلومات حول شراء ترخيص لهذا المنتج لأي استخدام آخر، يُرجى التواصل مع شركة لايف تكنولوجيز، وحدة أعمال تحليل الخلايا، قسم تطوير الأعمال، 29851 طريق ويلو كريك، يوجين، أوريغون 97402، الولايات المتحدة الأمريكية، هاتف: 5414658300، فاكس: 5413350504. يتم جمع انبعاث فلوروكروم أليكسا فلور® 647 بنفس إعدادات الجهاز المستخدمة في قياس الألوفيوكوسيانين (APC). قد يكون هذا المنتج مشمولاً ببراءة الاختراع الأمريكية رقم 5,543,320. براءة الاختراع الأمريكية رقم 5,994,515، جامعة بنسلفانيا. مصدر جميع بروتينات المصل هو مسالخ معتمدة من وزارة الزراعة الأمريكية تقع في الولايات المتحدة. تنبيه: ينتج أزيد الصوديوم حمض الهيدرازويك شديد السمية في الظروف الحمضية. قم بتخفيف مركبات الأزيد بالماء الجاري قبل التخلص منها لتجنب تراكم رواسب قابلة للانفجار في أنابيب الصرف الصحي.
الوصف: الكمية/الحجم: رقم القطعة: معرف EntrezGene
غير متوفر : 5.0 : غير متوفر : غير متوفر