BD, 572316, Panel de proteínas inmunooncológicas BD® OMICS-One

Reactividad: Humana (Probada en desarrollo)
Aplicación: Secuenciación de 3' de células individuales, secuenciación de 3' de células individuales (calificada)
Estado regulatorio: RUO
Descripción: Descripción El panel de proteínas inmuno-oncológicas BD® OMICS-One consta de seis tubos individuales: dos tubos de panel de proteínas de células T (1 prueba/tubo) que contienen 30 especificidades diferentes contra los principales marcadores de células T, dos tubos de panel de proteínas de células B (1 prueba/tubo) que contienen 30 especificidades diferentes contra los principales marcadores de células B y dos tubos de panel de proteínas tumorales (1 prueba/tubo) que contienen 30 especificidades diferentes contra los principales marcadores tumorales. Diseñado y optimizado para funcionar en el sistema BD Rhapsody™, el panel de proteínas inmunooncológicas se ha probado para funcionar a la perfección con el ensayo de análisis del transcriptoma completo (WTA) BD Rhapsody™, el ensayo de ARNm dirigido, el kit de multiplexación de células individuales BD® (SMK), el ensayo CITE-seq intracelular BD® (IC-AbSeq) y el ensayo multiómico BD Rhapsody™ TCR/BCR Next para humanos. Cada anticuerpo individual se conjugó con un oligonucleótido que contiene una secuencia de código de barras de anticuerpo específica, flanqueada por una cola de poliA en el extremo 3' y un asa de PCR común (sitio de unión del cebador de PCR) en el extremo 5'. Todas las secuencias de código de barras AbSeq se generaron in silico con una similitud mínima de secuencia con los genomas humanos, presentan una estructura secundaria predicha baja y una distancia de Hamming alta dentro del portafolio de anticuerpos-oligos de BD, lo que permite la corrección de errores de secuenciación y un mapeo único. La cola de poliA del oligonucleótido permite que la secuencia del código de barras sea capturada por las perlas de captura celular mejoradas BD Rhapsody™. El asa de PCR de 5' permite la generación eficiente de bibliotecas para diversas plataformas de secuenciación. Cada anticuerpo individual se encuentra en una concentración óptima dentro del panel de 59 plexos para lograr una resolución superior tanto del objetivo como de la población. El panel de proteínas inmunooncológicas está diseñado con tecnología SMART. Esta tecnología ayuda a reducir el coste de secuenciación, a la vez que aumenta la resolución de los datos al atenuar los anticuerpos dirigidos a marcadores primarios de alta expresión y permitir la reasignación de lecturas de secuenciación a marcadores expresados ​​a niveles más bajos. Con la tecnología SMART, los marcadores de baja expresión pueden cuantificarse sin necesidad de una secuenciación más profunda ni de un coste elevado. El panel de proteínas inmunooncológicas atenua seis especificidades: CD4, CD43, CD44, CD45, HLA-DR y HLA-ABC.
Preparación y almacenamiento: Conservar a 2-8 °C y protegido de la luz. No congelar.
Procedimientos de ensayo recomendados: Procedimientos de ensayo recomendados Nota: El protocolo admite el marcaje de Ab-Oligos de 1 a 2 millones de células por tubo. 1. Retire un tubo de BD® OMICS-One T-Cell Protein Panel, un tubo de BD® OMICS-One B-Cell Protein Panel y un tubo de BD® OMICS-One Tumor Protein Panel de las bolsas de aluminio y deje que alcancen la temperatura ambiente durante 5 minutos. 2. Asegúrese de que todos los pellets se encuentren en el fondo de los tubos. De lo contrario, centrifugue brevemente para recoger el contenido en el fondo del tubo. 3. Para cada tubo, agregue 35 µL de agua libre de nucleasas al fondo del tubo y permita que los anticuerpos se reconstituyan durante 5 minutos a temperatura ambiente. 4. Transfiera los anticuerpos reconstituidos a hielo hasta que las células estén listas para la tinción. Nota: Reconstituya el anticuerpo inmediatamente antes de la tinción celular. La incubación prolongada del anticuerpo reconstituido puede aumentar el fondo no específico. 5. Para la inoculación directa de BD® AbSeq Ab-Oligo con 25 plex o menos, prepare la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq en un tubo LoBind de 1,5 ml en hielo. El siguiente cálculo corresponde al procedimiento con el bloque Fc opcional. Si no se realiza el bloque Fc, añada 25 µl de tampón de tinción BD Pharmingen™ (FBS) al volumen total de la mezcla maestra de etiquetado Abseq para cada muestra. Nota: Para inoculaciones directas con más de 25 plex, contacte con el soporte técnico para realizar el cálculo. Para el etiquetado secuencial con etiquetas de muestra o sin etiquetas de muestra, prepare la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq para drop-ins de la siguiente manera: ____________________________________________________________________________________________ Componente 1 muestra (µL) 1 muestra + 2 muestras + 30 % de exceso (µL) 30 % de exceso (µL) Por BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 2,6 5,2 Total de BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 × N* 2,6 × N 5,2 × N FBS † (número de catálogo 554656) 70 – (2,0 x N) 91 – (2,6 x N) 182 – (5,2 x N) Total 70 91 182 Para el etiquetado conjunto con etiquetas de muestra, prepare la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq para drop-ins de la siguiente manera: ____________________________________________________________________________________________ Componente 1 muestra (µL) 1 muestra + 2 muestras + 30% excedente (µL) 30% excedente (µL) Por BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 2,6 5,2 Total de BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 × N* 2,6 × N 5,2 × N FBS † (número de catálogo 554656) 50 – (2,0 × N) 65 – (2,6 × N) 130 – (5,2 × N) Total 50 65 130 * N = número de anticuerpos de inserción directa. N = 0 si no hay anticuerpos de inserción directa. † FBS = tampón de tinción BD Pharmingen™. 6. Mezcle con pipeta el MasterMix de etiquetado BD® AbSeq para las inserción directa. Centrifugue brevemente para recoger el contenido en el fondo y vuelva a colocar en hielo. 7. Para el etiquetado secuencial con etiquetas de muestra o sin etiquetas de muestra, para cada muestra, combine los tres tubos que contienen 35 µL de solución reconstituida del panel de proteínas de células T, 35 µL de solución reconstituida del panel de proteínas de células B y 35 µL de solución reconstituida del panel de proteínas tumorales. Luego, agregue 70 µL de BD® AbSeq labeling MasterMix de gotas al tubo que contiene 105 µL de solución reconstituida del panel de proteínas de células T, células B y tumores para completar un volumen total de 175 µL. Para el coetiquetado con etiquetas de muestra, para cada muestra, combine los tres tubos que contienen 35 µL de solución reconstituida del panel de proteínas de células T, 35 µL de solución reconstituida del panel de proteínas de células B y 35 µL de solución reconstituida del panel de proteínas tumorales. A continuación, añada 50 µL de la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq de gotas y 20 µL de etiqueta de muestra al tubo que contiene un total de 105 µL de solución reconstituida de panel de células T, células B y proteínas tumorales para completar un volumen total de 175 µL. 8. Mezcle con la pipeta la mezcla, centrifugue brevemente para recoger el contenido en el fondo del tubo y vuelva a colocar en hielo. 9. Centrifugue las células a 400 × g durante 5 minutos. Si se utiliza Fc Block, continúe con el paso 10. Si no se utiliza Fc Block, vaya al paso 11. 10. (Opcional) Para las muestras que contienen linfocitos mieloides y B, BD Biosciences recomienda bloquear las señales de falsos positivos mediadas por el receptor Fc no específico con Human BD Fc Block (número de catálogo 564220). a. Para realizar el bloqueo, pipetee el Fc Block MasterMix en un tubo LoBind nuevo de 1,5 mL en hielo: _________________________________________________________________________________ Componente 1 muestra (µL)* 1 muestra + 20 % de exceso (µL) FBS† (número de catálogo 554656) 20,0 24,0 Fc Block‡ (número de catálogo 564220) 5,0 6,0 Total 25,0 30,0 * Suficiente para hasta 1 millón de células. Para bloquear más células, ajuste el volumen. † FBS = tampón de tinción BD Pharmingen™. ‡ Fc Block = BD Pharmingen™ Human BD Fc Block. b. Pipetee y mezcle el Fc Block MasterMix y centrifugue brevemente. Coloque en hielo. c. Retire el sobrenadante de las células sin alterar el sedimento. d. Resuspenda las células en 25 µL de Fc Block MasterMix. e. Incube las células a temperatura ambiente (15 °C a 25 °C) durante 10 minutos. f. Añada 175 µL de BD® AbSeq labeling MasterMix del paso 8 a la suspensión celular. Pipetee y mezcle y proceda al paso 12. 11. Retire el sobrenadante de las células sin alterar el pellet. Añada 25 µL de tampón de tinción (FBS) a los 175 µL de BD® AbSeq labeling MasterMix del paso 8 para completar un volumen total de 200 µL. Resuspenda el pellet celular en un volumen total de 200 µL. Pipetee y mezcle. 12. Transfiera las células con BD® AbSeq labeling MasterMix a un nuevo tubo Falcon de poliestireno de 5 mL. 13. Teñir las células en hielo durante 30 minutos. 14. Añada 3-4 mL de tampón de tinción (FBS) a las células marcadas y mezcle con la pipeta. 15. Centrifugue a 400 xg durante 5 minutos. 16. Destape el tubo e inviértalo para decantar el sobrenadante en residuos biopeligrosos. Mantenga el tubo invertido y seque suavemente con una toallita sin pelusa para eliminar el sobrenadante residual del borde del tubo. 17. Repita los pasos 14-16 dos veces más para un total de tres lavados. 18. Resuspenda el sedimento celular lavado final en 620 µL de tampón de muestra frío del reactivo de cartucho mejorado BD Rhapsody™ V3 (número de catálogo 667052) y proceda a la captura de células individuales con el lavado en el cartucho descrito en los subpasos a-c. Consulte el Protocolo de Captura de Células Individuales y Síntesis de ADNc del Sistema de Análisis de Células Individuales BD Rhapsody™ HT (Doc ID 23-24252) o el Protocolo de Captura de Células Individuales y Síntesis de ADNc del Sistema BD Rhapsody™ HT Xpress (Doc ID 23-24253) para obtener más información. Nota: Realice el lavado en el cartucho después de la sedimentación celular (incubación de 8 minutos) de la siguiente manera: a. En la sección del protocolo "Carga de células en el Cartucho de 8 Carriles BD Rhapsody™", después de la carga celular, incube el cartucho en oscuridad a temperatura ambiente durante 8 minutos. b. Coloque el cartucho en el BD Rhapsody™ HT Xpress y realice los pasos de lavado en el cartucho que se enumeran a continuación: _____________________________________________________________ Material para cargar Volumen (µL) 1 carril Modo de pipeta Aire 380 Cebado/lavado Tampón de muestra fría 380 Cebado/lavado Aire 380 Cebado/lavado Tampón de muestra fría 380 Cebado/lavado c. (Opcional) Realice el paso del escáner: Escaneo de carga celular, si utiliza el protocolo de captura de células individuales y síntesis de ADNc del sistema de análisis de células individuales BD Rhapsody™ HT (ID de documento 23-24252). No es necesario un retraso de 8 minutos antes del escaneo. Advertencia: Todas las muestras y materiales biológicos se consideran biopeligrosos. Manéjelos como si fueran capaces de transmitir infecciones y deséchelos utilizando las precauciones adecuadas de acuerdo con las regulaciones federales, estatales y locales. Nunca pipetee con la boca. Use ropa, gafas y guantes de protección adecuados. Lista de las 30 especificidades AbSeq humanas incluidas en el panel de células T BD® OMICS-One: _____________________________________________________________________________ Especificidad Clon Oligo ID BD® AbSeq Código de barras Secuencia CD103 Ber-ACT8 AHS0001 AAATAGTATCGAGCGTAGTTAAGTTGCGTAGCCGTT CD137 4B4-1 AHS0003 TGACAAGCAACGAGCGATACGAAAGGCGAAATTAGT CD45RA HI100 AHS0009 AAGCGATTGCGAAGGGTTAGTCAGTACGTTATGTTG CD69 FN50 AHS0010 CAATAACGGGTCATAGTAAGTCGCGAGTAAGAGGGC CD278 DX29 AHS0012 ATAGTCCGCCGTAATCGTTGTGTCGCTGAAAGGGTT CD134 (OX40) ACT35 AHS0013 GGTGTTGGTAAGACGGACGGAGTAGATATTCGAGGT CD279 (PD-1) † EH12.1 AHS0014 ATGGTAGTATCACGACGTAGTAGGGTAATTGGCAGT CD366 (TIM-3) 7D3 AHS0016 TAGGTAGTAGTCCCGTATATCCGATCCGTGTTGTTT CD223 (Lag3) T47-530 AHS0018 CGGCATGAATTAGGCGAGACTTAGTATACGAGCTGG CD95 (Fas) DX2 AHS0023 GGCCCGTTAGAGTTGGTATCCGTATGAAGGTTAGCT CD25 2A3 AHS0026 AGTTGTATGGGTTAGCCGAGAGTAGTGCGTATGATT CD127 HIL-7R-M21 AHS0028 AGTTATTAGGCTCCGTAGGTATGTTTAGGTTATCGCG CD183 1C6/CXCR3 AHS0031 AAAGTGTTGGCGTTATGTGTTCGTTAGCGGTGTGGG CD4 SK3 AHS0032 TCGGTGTTATGAGTAGGTCGTCGTGCGGTTTGATGT CD196 (CCR6) 11A9 AHS0034 ACGTGTTATGGTGTTGTTCGAATTGTGGTAGTCAGT CD45RO UCHL1 AHS0036 TGAGAGGTTATTGGGCGTATGACTTCGGTGATTGTG CD194 (CCR4) 1G1 AHS0038 AATATTAGTGGGTCCTCGCGTTGGCCGGTTGTTAGT CD62L DREG-56 AHS0049 ATGGTAAATATGGGCGAATGCGGGTTGTGCTAAAGT CD272 J168-540 AHS0052 GTAGGTTGATAGTCGGCGATAGTGCGGTTGAAAGCT CD154 TRAP1 AHS0077 TAAGAGGTAAGTGCATTCGGGTATAGGCGTGATTTG CD357 (GITR) V27-580 AHS0104 TCTGTGTGTCGGGTTGAATCGTAGTGAGTTAGCGTG CD28 L293 AHS0138 TTGTTGAGGATACGATGAAGCGGTTTAAGGGTGTGG TCRgd 11F2 AHS0142 CTCGTGGGTTAGGCTTGATCGTAGTTATGTATGGTT CD44 † L178 AHS0167 GTGATTGATTAGGACAGTTCGTTGCTTAGTAGTGGG TCR Va24-Ja18 6B11 AHS0175 TTCTGGTTCGGTTGAGCTACTAATTTCGTTGGATGG CD161 (KLRB1) HP-3G10 AHS0205 TTTAGGACGATTAGTTGTGCGGCATAGGAGGTGTTC CD8 SK1 AHS0228 AGGACATAGAGTAGGACGAGGTAGGCTTAAATTGCT CD3 UCHT1 AHS0231 AGCTAGGTGTTATCGGCAAGTTGTACGGTGAAGTCG CD197 (CCR7) 2-L1-A AHS0273 AATGTGTGATCGGCAAAGGGTTCTCGGGTTAATATG TIGIT tgMab-2 AHS0411 AGAGGGTTTAGTCAAGGTCGTGCGTATAGTTCAGGT Lista de las 30 especificidades AbSeq humanas incluidas en el panel de células B BD® OMICS-One: _______________________________________________________________________________ Especificidad Clon Oligo ID Secuencia de código de barras AbSeq BD® CD20 2H7 AHS0008 TTGCTTGTTGCGCGTTAGAGAGTATGTCGGGAGATG CD275 2D3/B7-H2 AHS0011 GTTTATATGTACGACGCCCGGTTGACGAGTGGAAGT CD38 HIT2 AHS0022 GTCAACGATGGGTAGCGGTAGAAATAACGGAACTGG CD95 DX2 AHS0023 GGCCCGTTAGAGTTGGTATCCGTATGAAGGTTAGCT CD27 M-T271 AHS0025 TGTCCGGTTTAGCGAATTGGGTTGAGTCACGTAGGT CD19 SJ25C1 AHS0030 TAGTAATGTGTTCGTAGCCGGTAATAATCTTCGTGG HLA-DR G46-6 AHS0035 TGTTGGTTATTCGTTAGGCATCCGTTTGGGCGTGG CD185 (CXCR5) RF8B2 AHS0039 AGGAAGGTCGATTGTATAACGCGGCATTGTAACGGC CD24 ‡ ML5 AHS0042 ACTTTGGGTTGAGCGCATGATTATTCGTGACACTTT CD80 L307.4 AHS0046 GAGGGTAACGGGTGTCCAAATATCGGCTGTGTAAGT CD5 UCHT2 AHS0047 ACGAAGCGAGCGAAGAACCTATGCGATTGAGTAAGT CD10 HI10a AHS0051 CCTGTTTGATGCGTACGGAGATTTAGCGGATTTATG IgD IA6-2 AHS0058 TGAGGGATGTATAGCGAGAATTGCGACCGTAGACTT IgG G18-145 AHS0059 AGGTAGGTTATCGTAGGGTAGACTTAGCGGGCATTG CD184 (CXCR4) 12G5 AHS0060 CAGTGTTTAGAGCGGGTTGCATATGTCGTTTAGAGG CD34 ‡ 581 AHS0061 TGGGTGTATTACGGTTAGTTTATGCGCGAAGGTGTT CD21 B-ly4 AHS0074 GTATTCGCGTATTGTCAGTCGGTAGGGTTATGGTCT CD9 M-L13 AHS0082 GGGTTGTAAGTCGTCGGAAGTGTGAAGCGTATAGTG CD126 M5 AHS0096 AATGGTGAATCGCCCTAGCAAGTGGTATCGGAATCG CD30 BERH8 AHS0114 CCAGTGTAGATTGAGCCGTCGATTTAGTTAGCAGTG CD40 5C3 AHS0117 GGTGTAATTGGGCTAGAACGTATATGCGGTAAGGCG CD138 MI15 AHS0121 TAAGCTGCCGGTATTGGAAACGTATCGATCTATTGG CD79B CB3-1 AHS0153 CATCATGAGTAGTTGCTTCGGCGAGTAGGTTTAATT CD22 HIB22 AHS0195 TGGTTCGTGACTGTATAGGCTTAGCTTAGGCAATTT IgM G20-127 AHS0198 TTTGGAGGGTAGCTAGTTGCAGTTCGTGGTCGTTTC CD43 1G10 AHS0200 ATGGCGGATGGATTTGTCGGTGATATTGCTCTCGTT CD268 (BAFF-R) 11C1 AHS0206 TGTGAATGAGTTAAGCGTCGCGGATATGTAGAGCCT CD23 EBVCS-5 AHS0210 TTTGATGTGGGCGGGTTGTATTACGGTTTCGAGTCT CD73 AD2 AHS0216 AAAGTAGGGTCGATCAAGGGAGTTAACGGTAGCGCT CD1d CD1d42 AHS0219 GTTAGGATTATTGACGTACCGAGTTAGGAGTGATTG Lista de las 30 especificidades de AbSeq humanas incluidas en el panel de tumores BD® OMICS-One: _____________________________________________________________________________ Especificidad Clon Oligo ID BD® AbSeq Código de barras Secuencia CD274 (PD-L1) MIH1 AHS0004 ATCGTAAGGCTCGTGGTTCGTAAGTAAGTTCGTATC CD279 (PD-1) † EH12.1 AHS0014 ATGGTAGTATCACGACGTAGTAGGGTAATTGGCAGT CD45 HI30 AHS0040 GTGCGAAATGGCGGAATGTTATCTGCGAATGTAGTC CD324 (E-cad) 67A4 AHS0041 GATATGAATGGGTTGCGGTGTAAAGTCGTAATGGTT CD24 ‡ ML5 AHS0042 ACTTTGGGTTGAGCGCATGATTATTCGTGACACTTT CD90 5E10 AHS0045 GACTATATGTACGGTGTTAATTCGGGATCCTGCGCT CD34 ‡ 581 AHS0061 TGGGTGTATTACGGTTAGTTTATGCGCGAAGGTGTT CD117 YB5.B8 AHS0064 GGATTAGTTGTCGTTATAGGGAGTGCGTTCTTAGCG HLA-A, B, C G46-2.6 AHS0066 GATATGCATGGCGAGTAGGTAGAACGAAGCTTAGGT CD54 HA58 AHS0076 AAGAGAATATATGCGTGCGTTGTTAAGGGAATGCGT CD29 MAR4 AHS0080 TGGTAAGGTGGTTGCGAGTAAGTAGCGGTGAGTTGT CD47 B6H12 AHS0087 TGTTAGGTTCGACGTATTATGTGTAGATCCGCAAGG CD326 (EpCam) EBA-1 AHS0089 TTGAGCGTAAAGTTGCGTCCGGTAATTGAGTTGCGT CD66 B1.1/CD66 AHS0094 GTCTGCGCAAGGTAAGCTAAGTAACGAAAGGGATCT CD133 W6B3C1 AHS0103 TTTGGTATTGGCACGGTTTGTAGCGAGTTGACGGTC CD26 M-A261 AHS0109 TGTAGGTTGCGCGGTTATTAGGGTATTATCGATCTG CD155 TX24 AHS0111 GCGGTGGATCGATGGGTATAGTTGGTAATTTGCGTC CD146 P1H12 AHS0127 AGGTTATTTAGGTGACGGTTGTATTGACGAGAGAGG C-MET 3D6 AHS0132 AGCGTGAGTTGTCGGTAGTTAATTATCGGAGAGTTT ITGRN BTA 7 FIB504 AHS0158 TTTCAGTTTGGTCGCAGTTAAGGTATCGTATGGGTC CD44 † L178 AHS0167 GTGATTGATTAGGACAGTTCGTTGCTTAGTAGTGGG PECAM1 (CD31) WM59 AHS0170 CTAAGGGACGTAATTGAGTTTCGGTGATCGCAGTTT EphB2 2H9 AHS0176 TATTGCGGGTAGGATTTGTCTCGAAGCGTAGGTAGC Vista MIH65.RMAB AHS0187 ATCAGGGAATCTCGGTAAGTTAAACGTGTATAGTGC PDPLN LPMAB-17 AHS0192 TTTATGAGTATTACGTCTGTTGCGATTGTTGGCGGT NOTCH1 MHN1-519 AHS0214 CGTAGTAGGAGCGTGTTTCATCGGCATTATCGTTTG CD325 (n-Cad) 8C11 AHS0223 TAGGATGAGTTTCGTAAGTAAGGTAGTCGTATGGCT CD58 1C3 AHS0237 TTGGTGAGTATTGGTGCGTAGTATGCGGGATGTTTG EGFR EGFR.1 AHS0241 ATATGATTGATGCGGGTTAGCCTACAGATTCGAGTT CD227 (MUC1) HMFG2 AHS0247 AGTGCATGGTTAGTAGGTGTGAGTCGTTAGATATTC * Los paneles de proteínas de células T y células B contienen el mismo anticuerpo CD95. † Los paneles de proteínas de células T y tumores contienen el mismo anticuerpo CD279 (PD-1) y CD44. ‡ Los paneles de proteínas de células B y tumores contienen el mismo anticuerpo CD24 y CD34.
Avisos del producto: Avisos del producto Consulte www.bdbiosciences.com/us/s/resources para conocer los protocolos técnicos. La fuente de todas las proteínas séricas proviene de mataderos inspeccionados por el USDA ubicados en los Estados Unidos. El proceso de producción se sometió a rigurosas pruebas y validación para garantizar que genera un conjugado de alta calidad con un rendimiento consistente y una actividad de unión específica. Sin embargo, no se han realizado pruebas de verificación en todos los lotes de conjugado. Consulte http://regdocs.bd.com para acceder a las hojas de datos de seguridad (SDS). Para conocer las patentes estadounidenses que puedan aplicar, consulte bd.com/patents. Precaución: La azida sódica produce ácido hidrazoico altamente tóxico en condiciones ácidas. Diluya los compuestos de azida en agua corriente antes de desecharlos para evitar la acumulación de depósitos potencialmente explosivos en las tuberías. Siga las pautas estatales y locales al desechar residuos peligrosos. Vaya a https://abseq-ref-gen.genomics.bd.com/ para acceder a los archivos de referencia de AbSeq en formato FASTA para análisis bioinformáticos. Este reactivo se proporciona liofilizado en un formato pretitulado.
Descripción: Cantidad/Tamaño: Número de pieza: ID de EntrezGene
N/A : nulo : N/A : N/A