Reactivos de análisis de proteínas Thermo Fisher para Western Blot, ELISA y proteómica
2527 productsDesde la cuantificación precisa de proteínas hasta el Western Blot, la purificación por afinidad, la reticulación y la proteómica basada en MS, esta colección seleccionada le ofrece reactivos Thermo Fisher de alto rendimiento, de confianza para la biología de proteínas diaria. Explore por caso de uso, compare especificaciones y acceda directamente a kits y químicas validadas.
¿Qué hay en esta colección (por familia de productos)?
Esta colección está organizada para ayudarle a encontrar rápidamente el reactivo adecuado para su flujo de trabajo, manteniendo la transparencia de los SKU para la compra y el cumplimiento normativo. A continuación, se presentan las principales familias que encontrará y ejemplos representativos.
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Ensayos de cuantificación de proteínas : BCA (por ejemplo, Pierce™ BCA Protein Assay Kit, Cat. 23225 ), Micro BCA ( 23227 ), reactivo de ensayo de 660 nm ( 22660 ) y kit completo ( 22662 ).

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Lisis celular e inhibidores : tampón de lisis RIPA ( 89900 ); cóctel inhibidor de proteasa Halt™ 100×, sin EDTA ( 87785 ) o con EDTA ( 87786 ); inhibidor combinado de proteasa/fosfatasa ( 78440 ).

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Reactivos de electroforesis y transferencia Western : sustrato SuperSignal™ West Pico PLUS ECL ( 34580 ); sustrato West Femto ( 34095 ); membranas de transferencia de PVDF en rollo de 0,45 µm ( 88518 ); membranas de nitrocelulosa de 0,45 µm ( 88018 ); PageRuler™ Plus Prestained Protein Ladder ( 26619 ).
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Herramientas de afinidad y limpieza : perlas magnéticas de proteína A/G ( 88802 ); Resina HisPur™ Ni-NTA ( 88221 ); Columnas de desalinización giratorias Zeba™ 7K MWCO ( 89882 , 89890 ).

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Conjugación y reticulación : EZ-Link™ Sulfo-NHS-Biotina ( 21217 ); EZ-Link™ NHS-PEG4-Biotina ( 21330 ); Reticulador BS3 ( 21580 , 21586 ).
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Preparación de muestras de proteómica : proteasa de tripsina Pierce™, grado MS ( 90057 ); etiquetas TMTpro™ de 16 plexos ( A44520 ) y 18 plexos ( A52045 ).
Compatibilidad y especificaciones (referencia rápida)
Elegir reactivos compatibles con la matriz de muestra y el método de detección ahorra tiempo en el proceso posterior. Utilice esta vista compacta para confirmar la compatibilidad antes de realizar el pedido y, a continuación, consulte las hojas de datos según sea necesario.
| Categoría | Lectura típica/poro | Compatibilidad de matrices (ejemplos) | Funciona con |
|---|---|---|---|
| Ensayo de proteína BCA | 562 nm | Tolera detergentes/agentes reductores (consulte las instrucciones de uso del kit) | Lectores de cubetas o placas |
| Ensayo de 660 nm | 660 nm | Detergentes, agentes reductores; IDCR opcional para detergentes iónicos | NanoDrop™, espectrofotómetros |
| Membrana de PVDF | 0,45 µm | Alta unión; robusto para la re-observación | Transferencia húmeda/de tanque o semiseca |
| Nitrocelulosa | 0,45 µm | Encuadernación rápida; fondo bajo | Transferencia húmeda/de tanque o semiseca |
| Sustratos ECL | Quimioluminiscencia HRP | Buffers de bloqueo TBS/TBST o PBS/PBST | Sistemas de imágenes/película |
| Su etiqueta IMAC | — | Condiciones nativas/desnaturalizantes | Gravedad, centrifugado y cartuchos FPLC |
| Perlas de proteína A/G | — | Lisados, IP/Co-IP | Rotores de tubos, imanes |
| Columnas de desalinización | MWCO de 7 kDa | Elimina sales, colorantes, biotina. | Centrífugas/multicanal |
Aplicaciones y flujos de trabajo (cuatro tarjetas de inicio rápido)
Estos flujos sencillos y fiables le ayudan a reducir las variables y a mantener la coherencia de los datos en todos los experimentos. Siga los pasos e introduzca los SKU exactos indicados anteriormente según sea necesario.
A. Western blot: del lisado a la señal
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Lise en RIPA ( 89900 ) + inhibidores de Halt ( 87785 ).
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Cuantificar (BCA 23225 o 660 nm 22660 ).
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Ejecutar SDS-PAGE; transferir a PVDF ( 88518 ) o nitrocelulosa ( 88018 ).
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Detectar con West Pico PLUS ( 34580 ) o West Femto ( 34095 ).
B. IP/Co-IP: enriquece tu público objetivo
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Lisado preaclarado; unirse a perlas magnéticas de proteína A/G ( 88802 ).
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Lavar; eluir en tampón suave.
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Analizar mediante SDS-PAGE y Western blot como se indica anteriormente.
C. Purificación y limpieza de la etiqueta His
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Se une a la resina HisPur Ni-NTA ( 88221 ) en condiciones nativas o desnaturalizantes.
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Eluir con imidazol; tampón de intercambio en columnas Zeba (0,5–2 mL: 89882 , 89890 ).
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Cuantificar y proceder a los ensayos posteriores.
D. Proteómica: digestión y multiplexación
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Reducir/alquilar; digerir con Pierce Trypsin MS-grade ( 90057 ).
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Etiquete los péptidos con TMTpro 16-plex ( A44520 ) o 18-plex ( A52045 ).
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Combinar, fraccionar y analizar por LC-MS/MS.
Consejos prácticos (para mejorar el éxito en el primer paso)
Antes de empezar, unos pequeños ajustes pueden mejorar considerablemente la reproducibilidad y la relación señal-ruido en los flujos de trabajo. Tenga a mano estas sugerencias al planificar y documentar sus ejecuciones.
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Adapte la química del ensayo a la matriz. Use 660 nm cuando sea inevitable el uso de detergentes iónicos o reductores fuertes; añada IDCR si es necesario para ampliar la tolerancia.
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Seleccione la membrana por tamaño. El PVDF o la nitrocelulosa de 0,45 µm son adecuados para la mayoría de las proteínas; considere 0,2 µm para objetivos de <20 kDa para reducir el paso.
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Elija el sustrato que mejor se adapte a la abundancia. West Pico PLUS para la expresión rutinaria; West Femto para objetivos muy bajos y así evitar la sobreexposición.
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Proteja las proteínas desde el principio. Añada inhibidores de Halt durante la lisis y mantenga las muestras frías para prevenir la proteólisis.
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Para purificaciones con etiqueta His, lavar con imidazol moderado (20–40 mM) para reducir la unión no específica antes de la elución.
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Utilice pasos de desalinización después del etiquetado, la reticulación o los cambios de tampón para mejorar el rendimiento del ensayo posterior.
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Documente el lote y el SKU en su ELN junto con los factores de dilución; esto acelera las auditorías y la transferencia de métodos.
Preguntas frecuentes
Respuestas sencillas a las preguntas que escuchamos con más frecuencia, con enlaces a documentación principal para una lectura más profunda.
P1: ¿Cuándo debo elegir el ensayo de 660 nm en lugar de BCA?
R: Si sus muestras contienen detergentes iónicos o altos niveles de reductor, el ensayo de 660 nm suele ser más tolerante (y puede combinarse con IDCR). Utilice BCA cuando la matriz sea más simple y desee un amplio rango dinámico con estándares compatibles.
P2: PVDF o nitrocelulosa: ¿qué es mejor para mi transferencia?
R: El PVDF ofrece mayor unión a proteínas y durabilidad para la reprobación; la nitrocelulosa es rápida y proporciona un fondo bajo. Ambos formatos de 0,45 µm son compatibles con la mayoría de las proteínas.
P3: ¿Con qué sustrato ECL debería empezar?
R: Comience con West Pico PLUS para objetivos típicos; pase a West Femto si la expresión es muy baja o si necesita la mayor sensibilidad sin extender los tiempos de exposición.
P4: ¿Puedo utilizar HisPur Ni-NTA en condiciones desnaturalizantes?
R: Sí. HisPur Ni-NTA es compatible con flujos de trabajo nativos o desnaturalizantes; solo asegúrese de que el imidazol y el pH estén optimizados.
P5: ¿Cuál es una preparación proteómica estándar desde células hasta LC-MS?
A: Lisar con inhibidores, reducir/alquilar, digerir con tripsina Pierce (grado MS), limpiar y multiplexar con etiquetas TMTpro antes de LC-MS/MS.
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Tony Tang
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