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    Reactivos de análisis de proteínas Thermo Fisher para Western Blot, ELISA y proteómica

    2527 products

    Desde la cuantificación precisa de proteínas hasta el Western Blot, la purificación por afinidad, la reticulación y la proteómica basada en MS, esta colección seleccionada le ofrece reactivos Thermo Fisher de alto rendimiento, de confianza para la biología de proteínas diaria. Explore por caso de uso, compare especificaciones y acceda directamente a kits y químicas validadas.

    ¿Qué hay en esta colección (por familia de productos)?

    Esta colección está organizada para ayudarle a encontrar rápidamente el reactivo adecuado para su flujo de trabajo, manteniendo la transparencia de los SKU para la compra y el cumplimiento normativo. A continuación, se presentan las principales familias que encontrará y ejemplos representativos.

    • Ensayos de cuantificación de proteínas : BCA (por ejemplo, Pierce™ BCA Protein Assay Kit, Cat. 23225 ), Micro BCA ( 23227 ), reactivo de ensayo de 660 nm ( 22660 ) ​​y kit completo ( 22662 ).

    Kit de análisis de proteínas Pierce™ BCA
    • Lisis celular e inhibidores : tampón de lisis RIPA ( 89900 ); cóctel inhibidor de proteasa Halt™ 100×, sin EDTA ( 87785 ) o con EDTA ( 87786 ); inhibidor combinado de proteasa/fosfatasa ( 78440 ).

    Cóctel inhibidor de proteasa Thermo Fisher Halt™ 100×
    • Reactivos de electroforesis y transferencia Western : sustrato SuperSignal™ West Pico PLUS ECL ( 34580 ); sustrato West Femto ( 34095 ); membranas de transferencia de PVDF en rollo de 0,45 µm ( 88518 ); membranas de nitrocelulosa de 0,45 µm ( 88018 ); PageRuler™ Plus Prestained Protein Ladder ( 26619 ).

    • Herramientas de afinidad y limpieza : perlas magnéticas de proteína A/G ( 88802 ); Resina HisPur™ Ni-NTA ( 88221 ); Columnas de desalinización giratorias Zeba™ 7K MWCO ( 89882 , 89890 ).

    Perlas magnéticas de proteína A/G
    • Conjugación y reticulación : EZ-Link™ Sulfo-NHS-Biotina ( 21217 ); EZ-Link™ NHS-PEG4-Biotina ( 21330 ); Reticulador BS3 ( 21580 , 21586 ).

    • Preparación de muestras de proteómica : proteasa de tripsina Pierce™, grado MS ( 90057 ); etiquetas TMTpro™ de 16 plexos ( A44520 ) y 18 plexos ( A52045 ).

    Compatibilidad y especificaciones (referencia rápida)

    Elegir reactivos compatibles con la matriz de muestra y el método de detección ahorra tiempo en el proceso posterior. Utilice esta vista compacta para confirmar la compatibilidad antes de realizar el pedido y, a continuación, consulte las hojas de datos según sea necesario.

    Categoría Lectura típica/poro Compatibilidad de matrices (ejemplos) Funciona con
    Ensayo de proteína BCA 562 nm Tolera detergentes/agentes reductores (consulte las instrucciones de uso del kit) Lectores de cubetas o placas
    Ensayo de 660 nm 660 nm Detergentes, agentes reductores; IDCR opcional para detergentes iónicos NanoDrop™, espectrofotómetros
    Membrana de PVDF 0,45 µm Alta unión; robusto para la re-observación Transferencia húmeda/de tanque o semiseca
    Nitrocelulosa 0,45 µm Encuadernación rápida; fondo bajo Transferencia húmeda/de tanque o semiseca
    Sustratos ECL Quimioluminiscencia HRP Buffers de bloqueo TBS/TBST o PBS/PBST Sistemas de imágenes/película
    Su etiqueta IMAC Condiciones nativas/desnaturalizantes Gravedad, centrifugado y cartuchos FPLC
    Perlas de proteína A/G Lisados, IP/Co-IP Rotores de tubos, imanes
    Columnas de desalinización MWCO de 7 kDa Elimina sales, colorantes, biotina. Centrífugas/multicanal

    Aplicaciones y flujos de trabajo (cuatro tarjetas de inicio rápido)

    Estos flujos sencillos y fiables le ayudan a reducir las variables y a mantener la coherencia de los datos en todos los experimentos. Siga los pasos e introduzca los SKU exactos indicados anteriormente según sea necesario.

    A. Western blot: del lisado a la señal

    1. Lise en RIPA ( 89900 ) + inhibidores de Halt ( 87785 ).

    2. Cuantificar (BCA 23225 o 660 nm 22660 ).

    3. Ejecutar SDS-PAGE; transferir a PVDF ( 88518 ) o nitrocelulosa ( 88018 ).

    4. Detectar con West Pico PLUS ( 34580 ) o West Femto ( 34095 ).

    B. IP/Co-IP: enriquece tu público objetivo

    1. Lisado preaclarado; unirse a perlas magnéticas de proteína A/G ( 88802 ).

    2. Lavar; eluir en tampón suave.

    3. Analizar mediante SDS-PAGE y Western blot como se indica anteriormente.

    C. Purificación y limpieza de la etiqueta His

    1. Se une a la resina HisPur Ni-NTA ( 88221 ) en condiciones nativas o desnaturalizantes.

    2. Eluir con imidazol; tampón de intercambio en columnas Zeba (0,5–2 mL: 89882 , 89890 ).

    3. Cuantificar y proceder a los ensayos posteriores.

    D. Proteómica: digestión y multiplexación

    1. Reducir/alquilar; digerir con Pierce Trypsin MS-grade ( 90057 ).

    2. Etiquete los péptidos con TMTpro 16-plex ( A44520 ) o 18-plex ( A52045 ).

    3. Combinar, fraccionar y analizar por LC-MS/MS.

    Consejos prácticos (para mejorar el éxito en el primer paso)

    Antes de empezar, unos pequeños ajustes pueden mejorar considerablemente la reproducibilidad y la relación señal-ruido en los flujos de trabajo. Tenga a mano estas sugerencias al planificar y documentar sus ejecuciones.

    • Adapte la química del ensayo a la matriz. Use 660 nm cuando sea inevitable el uso de detergentes iónicos o reductores fuertes; añada IDCR si es necesario para ampliar la tolerancia.

    • Seleccione la membrana por tamaño. El PVDF o la nitrocelulosa de 0,45 µm son adecuados para la mayoría de las proteínas; considere 0,2 µm para objetivos de <20 kDa para reducir el paso.

    • Elija el sustrato que mejor se adapte a la abundancia. West Pico PLUS para la expresión rutinaria; West Femto para objetivos muy bajos y así evitar la sobreexposición.

    • Proteja las proteínas desde el principio. Añada inhibidores de Halt durante la lisis y mantenga las muestras frías para prevenir la proteólisis.

    • Para purificaciones con etiqueta His, lavar con imidazol moderado (20–40 mM) para reducir la unión no específica antes de la elución.

    • Utilice pasos de desalinización después del etiquetado, la reticulación o los cambios de tampón para mejorar el rendimiento del ensayo posterior.

    • Documente el lote y el SKU en su ELN junto con los factores de dilución; esto acelera las auditorías y la transferencia de métodos.

    Preguntas frecuentes

    Respuestas sencillas a las preguntas que escuchamos con más frecuencia, con enlaces a documentación principal para una lectura más profunda.

    P1: ¿Cuándo debo elegir el ensayo de 660 nm en lugar de BCA?
    R: Si sus muestras contienen detergentes iónicos o altos niveles de reductor, el ensayo de 660 nm suele ser más tolerante (y puede combinarse con IDCR). Utilice BCA cuando la matriz sea más simple y desee un amplio rango dinámico con estándares compatibles.

    P2: PVDF o nitrocelulosa: ¿qué es mejor para mi transferencia?
    R: El PVDF ofrece mayor unión a proteínas y durabilidad para la reprobación; la nitrocelulosa es rápida y proporciona un fondo bajo. Ambos formatos de 0,45 µm son compatibles con la mayoría de las proteínas.

    P3: ¿Con qué sustrato ECL debería empezar?
    R: Comience con West Pico PLUS para objetivos típicos; pase a West Femto si la expresión es muy baja o si necesita la mayor sensibilidad sin extender los tiempos de exposición.

    P4: ¿Puedo utilizar HisPur Ni-NTA en condiciones desnaturalizantes?
    R: Sí. HisPur Ni-NTA es compatible con flujos de trabajo nativos o desnaturalizantes; solo asegúrese de que el imidazol y el pH estén optimizados.

    P5: ¿Cuál es una preparación proteómica estándar desde células hasta LC-MS?
    A: Lisar con inhibidores, reducir/alquilar, digerir con tripsina Pierce (grado MS), limpiar y multiplexar con etiquetas TMTpro antes de LC-MS/MS.

    CTA — Crea tu kit y obtén resultados confiables

    ¿Listo para configurar tu flujo de trabajo? Agrega los SKU anteriores a tu carrito o solicita una lista de materiales personalizada según tu aplicación (Western blot, IP, IMAC o proteómica). Si nos compartes tu tipo de muestra y sistema de detección, te recomendaremos un paquete que se ajuste a tu presupuesto y plazo.

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