BD, 572615, Panel de proteínas inmunooncológicas innatas BD® OMICS-One

Reactividad: Humana (Probada en desarrollo)
Solicitud: Secuenciación de 3' de células individuales (calificada)
Estado regulatorio: RUO
Descripción: Descripción El panel de proteínas innatas de inmunooncología BD® OMICS-One consta de 6 tubos individuales, 2 tubos de panel de proteínas tumorales (1 prueba/tubo) que contiene 30 especificidades diferentes contra los principales marcadores tumorales, 2 tubos de panel de proteínas de células NK (1 prueba/tubo) que contiene 30 especificidades diferentes contra los principales marcadores de células NK y 2 tubos de panel de proteínas de células mieloides/APC (1 prueba/tubo) que contiene 30 especificidades diferentes contra los principales marcadores de células mieloides/APC. Diseñado y optimizado para funcionar en el sistema BD Rhapsody™, el panel de proteínas de inmunooncología innata se ha probado para funcionar a la perfección con el ensayo de análisis del transcriptoma completo (WTA) BD Rhapsody™, el ensayo de ARNm dirigido, el kit de multiplexación de células individuales BD® (SMK), el ensayo CITE-seq intracelular BD® (IC-AbSeq) y el ensayo multiómico BD Rhapsody™ TCR/BCR Next para humanos. Cada anticuerpo individual se conjugó con un oligonucleótido que contiene una secuencia de código de barras de anticuerpo específica, flanqueada por una cola de poliA en el extremo 3' y un asa de PCR común (sitio de unión del cebador de PCR) en el extremo 5'. Todas las secuencias de código de barras AbSeq se generaron in silico con una similitud mínima de secuencia con los genomas humanos, presentan una estructura secundaria predicha baja y una distancia de Hamming alta dentro del portafolio de anticuerpos-oligos de BD, lo que permite la corrección de errores de secuenciación y un mapeo único. La cola de poliA del oligonucleótido permite capturar la secuencia del código de barras con las perlas de captura celular mejoradas BD Rhapsody™. El asa de PCR de 5' permite la generación eficiente de bibliotecas para diversas plataformas de secuenciación. Cada anticuerpo individual se encuentra en una concentración óptima dentro del panel de 84 plexos para lograr una resolución superior tanto del objetivo como de la población. El panel de proteínas de inmunooncología innata está diseñado con tecnología SMART. Esta tecnología ayuda a reducir los costes de secuenciación, a la vez que aumenta la resolución de los datos al atenuar los anticuerpos dirigidos a marcadores primarios de alta expresión y permitir la reasignación de las lecturas de secuenciación a marcadores expresados ​​a niveles más bajos. Con la tecnología SMART, los marcadores de baja expresión se pueden cuantificar sin necesidad de una secuenciación más profunda ni de un alto coste de secuenciación. El panel de proteínas de inmunooncología innata contiene seis especificidades atenuadas: CD2 y CD31, CD44, CD45, HLA-DR y HLA-ABC.
Preparación y almacenamiento: Conservar a 2-8 °C y protegido de la luz. No congelar.
Procedimientos de ensayo recomendados: Este reactivo se proporciona liofilizado en un formato pretitulado. Cada prueba puede teñir hasta 2 millones de células. 1. Retire un tubo de BD® OMICS-One Tumor Protein Panel, un tubo de BD® OMICS-One NK-Cell Protein Panel y un tubo de BD® OMICS-One APC/Myeloid-Cell Protein Panel de las bolsas de aluminio y deje que alcancen la temperatura ambiente durante 5 minutos. 2. Asegúrese de que todos los pellets se encuentren en el fondo de los tubos. De lo contrario, centrifugue brevemente para recoger el contenido en el fondo del tubo. 3. Para cada tubo, agregue 35 µL de agua libre de nucleasas al fondo del tubo y deje que los anticuerpos se reconstituyan durante 5 minutos a temperatura ambiente. 4. Coloque los anticuerpos reconstituidos en hielo hasta que las células estén listas para la tinción. Nota: Reconstituya el anticuerpo inmediatamente antes de la tinción celular. La incubación prolongada del anticuerpo reconstituido puede aumentar el fondo no específico. 5. Para la prueba drop-in de BD® AbSeq Ab-Oligo de 25 plex o menos, prepare la MasterMix de etiquetado de BD® AbSeq en un tubo LoBind de 1,5 ml con hielo. Nota: Para pruebas drop-in con más de 25 plex, contacte con el soporte técnico para realizar el cálculo. Si se realiza un etiquetado secuencial con etiquetas de muestra o sin etiquetas de muestra, prepare la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq para las muestras directas de la siguiente manera: ____________________________________________________________________________________________ Componente 1 muestra (µL) 1 muestra + 2 muestras + 30 % de exceso (µL) 30 % de exceso (µL) Por BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 2,6 5,2 Total de BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 × N* 2,6 × N 5,2 × N FBS † (número de catálogo 554656) 70 – (2,0 x N) 91 – (2,6 x N) 182 – (5,2 x N) Total 70 91 182 Si se realiza un etiquetado conjunto con etiquetas de muestra, prepare la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq para las muestras directas de la siguiente manera: ____________________________________________________________________________________________ Componente 1 muestra (µL) 1 muestra + 2 muestras + 30% de exceso (µL) 30% de exceso (µL) Por BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 2,6 5,2 Total de BD® AbSeq Ab-Oligo 2,0 × N* 2,6 × N 5,2 × N FBS † (número de catálogo 554656) 50 – (2,0 × N) 65 – (2,6 × N) 130 – (5,2 × N) Total 50 65 130 * N = número de anticuerpos de inserción directa. N = 0 si no hay anticuerpos de inserción directa. † FBS = tampón de tinción BD Pharmingen™. 6. Pipetee la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq para drop-ins. Centrifugue brevemente para recoger el contenido en el fondo y vuelva a colocar en hielo. 7. Para el etiquetado secuencial con o sin etiquetas de muestra, combine para cada muestra los tres tubos que contienen 35 μl de solución reconstituida de panel de proteínas de células NK, 35 μl de solución reconstituida de panel de proteínas de células mieloides/PCA y 35 μl de solución reconstituida de panel de proteínas tumorales. A continuación, añada 70 μl de la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq para drop-ins al tubo que contiene 105 μl de solución reconstituida de paneles de proteínas tumorales, de células NK y de células mieloides/PCA para completar un volumen total de 175 μl. Para el comarcaje con etiquetas de muestra, para cada muestra, combine los tres tubos que contienen 35 μL de solución reconstituida de panel de proteínas de células NK, 35 μL de solución reconstituida de panel de proteínas de células APC/mieloide y 35 μL de solución reconstituida de panel de proteínas tumorales. A continuación, añada 50 μL de la mezcla maestra de etiquetado BD® AbSeq de gotas y 20 μL de etiqueta de muestra al tubo que contiene 105 μL de solución de paneles de proteínas tumorales, de células NK y de células APC/mieloide para completar un volumen total de 175 μL. 8. Mezcle la mezcla con pipeta, centrifugue brevemente para recoger el contenido en el fondo del tubo y vuelva a colocarlo en hielo. 9. Centrifugue las células a 400 × g durante 5 minutos. Si se utiliza Fc Block, vaya al paso 10. Si no se utiliza Fc Block, vaya al paso 11. 10. (Opcional) Para muestras que contienen linfocitos B y mieloides, BD Biosciences recomienda bloquear las señales falsas positivas mediadas por el receptor Fc no específico con Human BD Fc Block (número de catálogo 564220). a. Para realizar el bloqueo, pipetee Fc Block MasterMix en un tubo LoBind nuevo de 1,5 mL en hielo: _________________________________________________________________________________ Componente 1 muestra (µL)* 1 muestra + 20 % de exceso (µL) FBS† (número de catálogo 554656) 20,0 24,0 Fc Block‡ (número de catálogo 564220) 5,0 6,0 Total 25,0 30,0 * Suficiente para hasta 1 millón de células. Para bloquear más células, ajuste el volumen. † FBS = Tampón de tinción BD Pharmingen™. ‡ Bloque Fc = Bloque Fc BD Pharmingen™ Humano. b. Pipetee la mezcla maestra del bloque Fc y centrifugue brevemente. Colóquela en hielo. c. Retire el sobrenadante de las células sin alterar el sedimento. d. Resuspenda las células en 25 μL de mezcla maestra del bloque Fc. e. Incube las células a temperatura ambiente (15 °C a 25 °C) durante 10 minutos. f. Añada 175 μL de la mezcla maestra de marcado BD® AbSeq del paso 8 a la suspensión celular. Pipetee la mezcla y continúe con el paso 12. 11. Retire el sobrenadante de las células sin alterar el sedimento. Añada 25 μL de tampón de tinción (FBS) a los 175 μL de BD® AbSeq labeling MasterMix del paso 8 para completar un volumen total de 200 μL. Resuspenda el pellet celular en un volumen total de 200 μL. Pipetee y mezcle. 12. Transfiera las células con BD® AbSeq labeling MasterMix a un nuevo tubo Falcon de poliestireno de 5 mL. 13. Teñir las células en hielo durante 30 minutos. 14. Añada 3-4 mL de tampón de tinción (FBS) a las células marcadas y pipetee y mezcle. 15. Centrifugue a 400 × g durante 5 minutos. 16. Destape el tubo e inviértalo para decantar el sobrenadante en residuos biopeligrosos. Mantenga el tubo invertido y seque suavemente con un paño sin pelusa para eliminar el sobrenadante residual del borde del tubo. 17. Repita los pasos 14 a 16 dos veces más para un total de tres lavados. 18. Resuspenda el sedimento celular lavado final en 620 µL de tampón de muestra frío del reactivo de cartucho mejorado BD Rhapsody™ V3 (número de catálogo 667052) y proceda a la captura de células individuales con el lavado en el cartucho descrito en los subpasos a–c. Consulte el protocolo de captura de células individuales y síntesis de ADNc del sistema de análisis de células individuales BD Rhapsody™ HT (ID de documento 23-24252) o el protocolo de captura de células individuales y síntesis de ADNc del sistema BD Rhapsody™ HT Xpress (ID de documento 23-24253) para obtener más información. Nota: Realice el lavado en el cartucho después de la sedimentación celular (incubación de 8 minutos) como se describe en los siguientes subpasos. a. En la sección del protocolo "Carga de células en el cartucho BD Rhapsody™ de 8 carriles", tras la carga celular, incube el cartucho en la oscuridad a temperatura ambiente durante 8 minutos. b. Coloque el cartucho en el BD Rhapsody™ HT Xpress y realice los pasos de lavado en el cartucho como se indica a continuación: _____________________________________________________________ Material a cargar Volumen (µL) 1 carril Modo Pipeta Aire 380 Cebado/Lavado Tampón de muestra fría 380 Cebado/Lavado Aire 380 Cebado/Lavado Tampón de muestra fría 380 Cebado/Lavado c. (Opcional) Realice el paso del escáner: Escaneo de carga celular, si utiliza el protocolo de captura de células individuales y síntesis de ADNc del sistema de análisis de células individuales BD Rhapsody™ HT (ID de documento 23-24252). No es necesario esperar 8 minutos antes del escaneo. Advertencia: Todas las muestras y materiales biológicos se consideran biopeligrosos. Manipule el producto como si fuera susceptible de transmitir infecciones y deséchelo tomando las precauciones adecuadas, de acuerdo con las normativas federales, estatales y locales. Nunca pipetee con la boca. Use ropa, gafas y guantes de protección adecuados. Lista de las 30 especificidades AbSeq humanas incluidas en el panel de tumores BD® OMICS-One: ______________________________________________________________________________ Especificidad Clon Oligo ID Código de barras BD® AbSeq Secuencia___________ CD274 (PD-L1)† MIH1 AHS0004 ATCGTAAGGCTCGTGGTTCGTAAGTAAGTTCGTATC CD279 (PD-1) EH12.1 AHS0014 ATGGTAGTATCACGACGTAGTAGGGTAATTGGCAGT CD45† HI30 AHS0040 GTGCGAAATGGCGGAATGTTATCTGCGAATGTAGTC CD324 (E-cad) 67A4 AHS0041 GATATGAATGGGTTGCGGTGTAAAGTCGTAATGGTT CD24 ML5 AHS0042 ACTTTGGGTTGAGCGCATGATTATTCGTGACACTTT CD90 5E10 AHS0045 GACTATATGTACGGTGTTAATTCGGGATCCTGCGCT CD34 581 AHS0061 TGGGTGTATTACGGTTAGTTTATGCGCGAAGGTGTT CD117 YB5.B8 AHS0064 GGATTAGTTGTCGTTATAGGGAGTGCGTTCTTAGCG HLA-A,B,C G46-2.6 AHS0066 GATATGCATGGCGAGTAGGTAGAACGAAGCTTAGGT CD54* HA58 AHS0076 AAGAGAATATATGCGTGCGTTGTTAAGGGAATGCGT CD29 MAR4 AHS0080 TGGTAAGGTGGTTGCGAGTAAGTAGCGGTGAGTTGT CD47 B6H12 AHS0087 TGTTAGGTTCGACGTATTATGTGTAGATCCGCAAGG CD326 (EpCam) EBA-1 AHS0089 TTGAGCGTAAAGTTGCGTCCGGTAATTGAGTTGCGT CD66 B1.1/CD66 AHS0094 GTCTGCGCAAGGTAAGCTAAGTAACGAAAGGGATCT CD133 W6B3C1 AHS0103 TTTGGTATTGGCACGGTTTGTAGCGAGTTGACGGTC CD26 M-A261 AHS0109 TGTAGGTTGCGCGGTTATTAGGGTATTATCGATCTG CD155 TX24 AHS0111 GCGGTGGATCGATGGGTATAGTTGGTAATTTGCGTC CD146 P1H12 AHS0127 AGGTTATTTAGGTGACGGTTGTATTGACGAGAGAGG C-MET 3D6 AHS0132 AGCGTGAGTTGTCGGTAGTTAATTATCGGAGAGTTT ITGRN BTA 7 FIB504 AHS0158 TTTCAGTTTGGTCGCAGTTAAGGTATCGTATGGGTC CD44 L178 AHS0167 GTGATTGATTAGGACAGTTCGTTGCTTAGTAGTGGG CD31 (PECAM1)* WM59 AHS0170 CTAAGGGACGTAATTGAGTTTCGGTGATCGCAGTTT EphB2 2H9 AHS0176 TATTGCGGGTAGGATTTGTCTCGAAGCGTAGGTAGC Vista† MIH65.RMAB AHS0187 ATCAGGGAATCTCGGTAAGTTAAACGTGTATAGTGC PDPLN LPMAB-17 AHS0192 TTTATGAGTATTACGTCTGTTGCGATTGTTGGCGGT NOTCH1 MHN1-519 AHS0214 CGTAGTAGGAGCGTGTTTCATCGGCATTATCGTTTG CD325 (n-Cad) 8C11 AHS0223 TAGGATGAGTTTCGTAAGTAAGGTAGTCGTATGGCT CD58 1C3 AHS0237 TTGGTGAGTATTGGTGCGTAGTATGCGGGATGTTTG EGFR EGFR.1 AHS0241 ATATGATTGATGCGGGTTAGCCTACAGATTCGAGTT CD227 (MUC1) HMFG2 AHS0247 AGTGCATGGTTAGTAGGTGTGAGTCGTTAGATATTC Lista de las 30 especificidades AbSeq humanas incluidas en el panel de células NK BD ® OMICS-One: ______________________________________________________________________________ Especificidad Clon Oligo ID BD® AbSeq Código de barras Secuencia___________ CD11b‡ M1/70 AHS0005 ATCGTTATTCGTTGTAGTTCGCCCGGTTTGAGTAGT CD56 NCAM16.2 AHS0019 AGAGGTTGAGTCGTAATAATAATCGGAAGGCGTTGG CD38 HIT2 AHS0022 GTCAACGATGGGTAGCGGTAGAAATAACGGAACTGG CD27 M-271 AHS0025 TGTCCGGTTTAGCGAATTGGGTTGAGTCACGTAGGT CD2 RPA-2.10 AHS0029 AAACGTAGATTAGAGCCGGGTATGTCGCAACTGATT CD16‡ 3G8 AHS0053 TAAATCTAATCGCGGTAACATAACGGTGGGTAAGGT CD184 (CXCR4) 12G5 AHS0060 CAGTGTTTAGAGCGGGTTGCATATGTCGTTTAGAGG CD49d 9F10 AHS0063 TAGGGTGACTTAGCGATTGATGCGTATGTTTGGGCG CD314 (NKG2D) 1D11 AHS0065 TTGAAATGCGATGAGACGTAGAGCGATGTAGGTAGC CD335 (NKP46) 9E2/NKP46 AHS0068 CAATTTGTTCGCGTTTAGTAGTCGTCGTCTTATGGG CD54* HA58 AHS0076 AAGAGAATATATGCGTGCGTTGTTAAGGGAATGCGT CD226 DX11 AHS0079 GAGTTTATGATTCGTTTCTTCGGTAGTTCGTCGCTT CD94 HP-3D9 AHS0085 GAGGTTAGGATAGGTGTACGGGTCGAGTTGAATTCT CD336 (NKP44) p44-8 AHS0090 AATGCAAACGATATCACGAAGGGTAGTACACGACGG CD49a SR84 AHS0101 ATGACACGAATGCGACGAGAGGCGAAATAGGTTGGT CX3CR1 2A9-1 AHS0125 GGGTTCACGAGGTTTAAAGCGGTAGTATAGGATGCC CD122 Mik-β3 AHS0146 TTAAAGAGATTCGTGGGTATTGGCGCAGTCATTCCT CD140b (PDGFR) 28D4 AHS0151 GACAACATTTAGGACGTGACGAGAGAGTATAGCTTC CD248 B1/35 AHS0156 ATCACTTATTTCGTTTGGAGGGTTCGTAGGCGTTGC CD63 H5C6 AHS0157 TGCAGCGTTAGGACCAAGCGTTTACCGTAGAATATT CD140a α-R1 AHS0160 TTACTGACTTTCGGACGTTGGTTACTTAGGGTTATG CD31 (PECAM1)* WM59 AHS0170 CTAAGGGACGTAATTGAGTTTCGGTGATCGCAGTTT CD96 6F9 AHS0194 CTAATGTAAGAGCGGACGTTTGGGCACTATATGTTT CD161 (KLRB1) HP-3G10 AHS0205 TTTAGGACGATTAGTTGTGCGGCATAGGAGGTGTTC CD158b (KIR) DX27 AHS0209 CGTAGGAGGATTTCGTCGATGGGTTTGTTAGCGTTC CD158e1 DX9 AHS0211 AGGTTCATTGCGGCATTAGGCGTCATATAGTAGGTG CD337/NKp30 P30-15 AHS0213 GGTAACTGACATGACGGAGCGATAATTTCTGGCGGT CD3 UCHT1 AHS0231 AGCTAGGTGTTATCGGCAAGTTGTACGGTGAAGTCG CD329 (Siglec-9) E10-286 AHS0239 CGGGCGCGAAGATAGGATAATAGGTAACGTCAAATG CD106 51-10C9 AHS0251 TCTGATTTAGCGGGTGGACGTATTATAGTGATTGGC_ Lista de las 30 especificidades AbSeq humanas incluidas en el panel APC/Myeloid-Cell de BD® OMICS-One: ______________________________________________________________________________ Especificidad Clon Oligo ID Código de barras BD® AbSeq Secuencia___________ CD103 BER-ACT8 AHS0001 AAATAGTATCGAGCGTAGTTAAGTTGCGTAGCCGTT CD274 (PD-L1)† MIH1 AHS0004 ATCGTAAGGCTCGTGGTTCGTAAGTAAGTTCGTATC CD11b‡ M1/70 AHS0005 ATCGTTATTCGTTGTAGTTCGCCCGGTTTGAGTAGT CD123 7G3 AHS0020 ACAGTTTAGTAGGACGTGAGGTATCGCGAGAATGCC HLA-DR G46-6 AHS0035 TGTTGGTTATTCGTTAGTGCATCCGTTTGGGCGTGG CD14 MPHIP9 AHS0037 TGGCCCGTGGTAGCGCAATGTGAGATCGTAATAAGT CD45† HI30 AHS0040 GTGCGAAATGGCGGAATGTTATCTGCGAATGTAGTC CD33 WM53 AHS0044 GTGTTAGTGATTTGATAGGACGCGTTACGAGAGATT CD80 L307.4 AHS0046 GAGGGTAACGGGTGTCCAAATATCGGCTGTGTAAGT CD16‡ 3G8 AHS0053 TAAATCTAATCGCGGTAACATAACGGTGGGTAAGGT CD64 10.1 AHS0055 TTGTGCGGCGTAGTATGGTTATCTCGAGTGAAAGTC CD11c B-LY6 AHS0056 ATGCGTTGCGAGAGATATGCGTAGGTTGCTGATTGG CD163 GHI/61 AHS0062 TATTATGTGCGAACTATGGTATCCGTATTGAGGGCT CD195 (CCR5) 2D7/CCR5 AHS0070 ATGGTTTAGTCGTACGTGGGTTTAGATTGGCGGTGC CD206 19.2 AHS0072 GCTGGTTATCGTTTGAGAGTCGGTATGGAATGCGGT CD32 FLI8.26 AHS0073 GGTTGTAGGTGCGGAATATAAGCGTCGTTGAGGTGT CD273 MIH18 AHS0075 TGAGTAACCGTATGTAATCCGTAATCGTAGAAGCGC CD141 1A4 AHS0083 TGGAAGTAAGTATGGGTCGGCGTAAATTGTGCGTGT CD1c F10/21A3 AHS0088 ATAGATTACATTCGTTTAGCGTTGGGTTCGGTCCGT CD40 5C3 AHS0117 GGTGTAATTGGGCTAGAACGTATATGCGGTAAGGCG FCeR1a AER-37 AHS0129 GATATGGCGTGATGGTAGGTTCGGTTTAAGTTAGCG CD169 7-239 AHS0133 CATTAAGCACGAAGGGTATAGGTAGGAACGGTTGGC CD36 IVC7 AHS0135 AATTGTAGTAGTCCGGTGTATGTAGAGTAGGCGTTT CD115 (CSF1R) 9-4D2-1E4 AHS0136 CTGGTGGCGGCGAATTTGGTTACGACATATAGGGTT CD162 KPL-1 AHS0139 CCAGATAGGCGATAGTGTTTAGGAGCGATTAGTGTG CD85K ZM3.8 AHS0179 AGTAGTCGTAGTTGGCGTGAATTGGGCTTATATCTG VISTA† MIH65.RMAB AHS0187 ATCAGGGAATCTCGGTAAGTTAAACGTGTATAGTGC CD15 W6D3 AHS0196 ATAGGCATGGACGACGTAGATAATAAGTGGCGGGTT CD192 (CCR2) LS132.1D9 AHS0208 CATGAGTGAGGCGATATAGTGAGCGGTTTGTAGATT CD116 Hgmcsfr1-M1 AHS0238 CTTAGTTGTAGGATCGAGAGTAGGTGTGCATTGCGT_ * Los paneles de proteínas de tumores y células NK contienen el mismo anticuerpo CD54 y CD31 (PECAM1). † Los paneles de proteínas de tumores y células APC/mieloides contienen el mismo anticuerpo CD274 (PD-L1), CD45 y VISTA. ‡ Los paneles de proteínas de células NK y células APC/mieloides contienen el mismo anticuerpo CD11b y CD16.
Avisos del producto: Este reactivo se suministra liofilizado en un formato pretitulado. El proceso de producción se sometió a rigurosas pruebas y validación para garantizar la generación de un conjugado de alta calidad con un rendimiento consistente y una actividad de unión específica. Sin embargo, no se han realizado pruebas de verificación en todos los lotes de conjugado. Visite https://www.bdbiosciences.com/en-us/resources/protocols/single-cell-multiomics para consultar los protocolos técnicos. Visite https://abseq-ref-gen.genomics.bd.com/ para acceder a los archivos de referencia de AbSeq en formato FASTA para análisis bioinformáticos. Precaución: La azida sódica produce ácido hidrazoico, altamente tóxico en condiciones ácidas. Diluya los compuestos de azida en agua corriente antes de desecharlos para evitar la acumulación de depósitos potencialmente explosivos en las tuberías. Siga las directrices estatales y locales al desechar residuos peligrosos. Todas las proteínas séricas provienen de mataderos inspeccionados por el USDA ubicados en Estados Unidos. Para conocer las patentes estadounidenses aplicables, consulte bd.com/patents. Lea y comprenda las fichas de datos de seguridad (FDS) antes de manipular productos químicos. Para obtener las FDS, visite regdocs.bd.com o contacte con el soporte técnico de BD Biosciences en scomix@bd.com.
Tablas: Descripción: Cantidad/Tamaño: Cantidad/Tamaño Número de pieza: Número de pieza ID de EntrezGene: ID de EntrezGene
Descripción: Cantidad/Tamaño: 1.0 Número de pieza: N/A ID de EntrezGene: N/A