BD, 562208, Panel de detección de marcadores de superficie celular de ratón BD Lyoplate™

Estado regulatorio: RUO
ID de registro: AB_2869400
Descripción: Descripción El panel de cribado de marcadores de superficie celular de ratón BD Lyoplate™ contiene 176 anticuerpos monoclonales purificados específicos para diferentes marcadores de superficie celular. El panel también contiene controles de isotipo de inmunoglobulina (Ig) de rata, ratón y hámster para evaluar la tinción de fondo inespecífica. El panel se puede utilizar para el cribado de líneas celulares, células primarias o tejidos y es compatible con plataformas de tecnología de citometría de flujo y bioimagen. El panel contiene tres placas de 96 pocillos con pocillos que contienen anticuerpos con 2,75 µg de anticuerpo primario cada uno (suficiente para cinco pruebas a 0,5 µg de anticuerpo/prueba). Los anticuerpos anti-Ig secundarios biotinilados y la estreptavidina conjugada con AlexaFluor® 647 como reactivo terciario también se incluyen en el panel. Este producto es compatible con células que expresan genes reporteros fluorescentes, como la proteína verde fluorescente (GFP). Se puede utilizar con anticuerpos adicionales que reconocen la superficie celular y las moléculas intracelulares. Los resultados positivos de las pruebas de detección pueden confirmarse mediante experimentos posteriores con anticuerpos purificados o fluorescentes de BD Biosciences. Para acceder a este contenido, busque el nombre del clon del anticuerpo o la especificidad en el sitio web de BD Biosciences: http://www.bdbiosciences.com. Componente 51-9007606AK - Panel de marcadores de superficie celular de ratón - Parte A • Placa Lyoplate 1 (1 de cada una) • Placa Lyoplate 2 (1 de cada una) • Placa Lyoplate 3 (1 de cada una) Almacenamiento: Conserve las placas sin abrir a temperatura ambiente (18-25 °C). Los anticuerpos se liofilizaron en una solución acuosa tamponada con BSA y ≤ 0,09 % de azida sódica. Componente 51-9007606BK - Panel de detección de marcadores de superficie celular de ratón - Parte B • Biotina Ig de cabra anti-rata (1,0 ml) • Biotina Ig de cabra anti-ratón (0,25 ml) • Biotina Ig de cabra anti-hámster armenio (0,25 ml) • Biotina Ig de cabra anti-hámster sirio (0,1 ml) • Alexa Fluor® 647 Estreptavidina (0,2 ml) Almacenamiento: Almacene los anticuerpos secundarios biotinilados y la estreptavidina fluorescente protegidos de la luz a 4 °C. Los anticuerpos secundarios biotinilados se proporcionan en una solución tamponada acuosa que contiene ≤ 0,09 % de azida sódica. Tenga en cuenta que los anticuerpos presentes en este panel pueden no reconocer todas las isoformas de cada marcador de superficie celular. Además, los clones de anticuerpos pueden comportarse de forma diferente en los tipos celulares según la disponibilidad de epítopos presentes; es decir, ciertos epítopos pueden ser ocluidos por modificaciones postraduccionales. Los resultados obtenidos en este análisis podrían ser relevantes únicamente para los clones de anticuerpos analizados. Además, dado que todos los anticuerpos se proporcionan en las mismas cantidades fijas, pueden o no estar en sus concentraciones óptimas. Por lo tanto, es importante verificar los resultados positivos del cribado con anticuerpos purificados o fluorescentes utilizados en concentraciones óptimas (determinadas por titulación) para confirmar los resultados.
Procedimientos de ensayo recomendados: Procedimientos de ensayo recomendados Importante: Lea las instrucciones antes de comenzar. Manipulación inicial de las placas: • No retire las placas de las bolsas de aluminio hasta que estén listas para usarse. La bolsa de aluminio es la principal barrera contra la humedad. Una vez que se retiran las placas de las bolsas de aluminio, se deben reconstituir los anticuerpos. • Antes de retirar el sello de aluminio, asegúrese de centrifugar las placas para sedimentar las tortas de Ab liofilizadas y tenga cuidado al retirar el sello de aluminio. Consulte la sección Reconstitución del anticuerpo a continuación para obtener más información. • Después de retirar el sello de aluminio y antes de la reconstitución, evite colocar la tapa de plástico o cualquier cubierta sobre las placas o volver a sellar las placas con un sello de placa adhesivo. En cada caso, la estática resultante puede hacer que las tortas de Ab liofilizadas se desprendan y escapen de los pocillos. • Puede notar que no todas las tortas de Ab liofilizadas tienen la misma apariencia física. Esto es esperable y no afectará el rendimiento de los anticuerpos. Preparación de la muestra: • Algunos marcadores de la superficie celular son sensibles a la digestión enzimática. Siempre que sea posible, utilice un tampón de disociación celular o tisular no enzimático para preparar las células para la citometría de flujo. Para la disociación enzimática de líneas celulares adherentes, recomendamos utilizar la solución de desprendimiento celular BD™ Accutase™ (n.º de cat. 561527). • Asegúrese de que las células estén en una única suspensión celular. Un paso de tratamiento con DNasa puede mitigar la agregación celular. • Algunos anticuerpos específicos para marcadores de superficie celular pueden producir artefactos (falsos positivos y negativos) cuando se utilizan para teñir células fijadas. Si la fijación es necesaria, la tinción de células vivas con fijación posterior antes del análisis puede ayudar a reducir estos artefactos. Recomendaciones para la tinción con anticuerpos: • Recomendamos evaluar la tinción de fondo en las células titulando los anticuerpos biotinilados secundarios y Alexa Fluor® 647 Streptavidin como reactivo terciario antes de intentar un cribado completo. Se ha proporcionado un exceso de anticuerpo secundario y reactivo terciario. En función de los tipos celulares analizados, recomendamos utilizar los anticuerpos secundarios biotinilados anti-rata, anti-ratón y anti-hámster sirio (Ig) a 1,25 μg/ml (100 μl por pocillo) y el anticuerpo secundario biotinilado anti-hámster armenio (Ig) a 0,6 μg/ml (100 μl por pocillo). • Si bien la mayoría de los anticuerpos del panel se obtuvieron en huéspedes de rata, algunos se obtuvieron en huéspedes de hámster sirio, hámster armenio o ratón. Para garantizar que se utilice el anticuerpo secundario biotinilado específico de la especie adecuado con las células teñidas con los anticuerpos primarios correspondientes, consulte la siguiente tabla y el diseño de la matriz con código de colores en las páginas 9 y 10 de este manual. Placa Mapa de placa secundaria Color de pocillo Pocillos Control secundario Pocillo 1 Rojo rata Todos los pocillos A1 2 Rojo rata A1-A12, B1-B12, C1- C8, D1-D7 A1 2 Amarillo sirio H1-H4 H4 3 Verde armenio A1-A12, B1-B12, C1-C2, D1-D6* A1 3 Azul ratón F1-F12, G1-G10, H1- H6 H6 • Compruebe si hay reactividad cruzada con los anticuerpos secundarios biotinilados si planea tratar células con un anticuerpo activador o inhibidor de su elección (p. ej., con anticuerpos solubles o unidos a la placa). • El kit contiene 27 anticuerpos de especificidad anti-ratón de ratón (incluidos cinco isotipos de Ig) en la placa 3. El reactivo secundario Ig de cabra anti-ratón policlonal biotinilado se unirá a las células del linaje de células B de ratón que expresan Ig de superficie. Por lo tanto, recomendamos que utilice tinciones de contrapunto apropiadas para delinear los tipos de células. Por ejemplo, se puede utilizar un anticuerpo anti-CD3 conjugado con un fluorocromo distinto de Alexa Fluor® 647 para activar las células T durante el análisis. • Recomendamos pocillos que contengan solo Ab secundario biotinilado con controles de estreptavidina Alexa Fluor® 647 y pocillos solo con células sin teñir como controles en cada experimento. El pocillo A1 en las placas 1 y 2 se puede utilizar para el control de anticuerpo secundario anti-Ig de rata. La placa 2, pocillo H4 se puede utilizar para el control de anticuerpo secundario anti-Ig de hámster sirio. La placa 3, pocillo A1 se puede utilizar para el control de anticuerpo secundario anti-Ig de hámster armenio. La placa 3, pocillo H6 se puede utilizar para el control de anticuerpo secundario anti-Ig de ratón. Cualquiera de los pocillos de tampón restantes se puede utilizar como controles de solo células sin teñir. • Se pueden añadir anticuerpos adicionales no incluidos actualmente en el panel de cribado de superficie celular de ratón BD Lyoplate al cribado en cualquiera de los pocillos grises que se muestran en los mapas de placas 2 y 3. • BD Fc Block™ de ratón: Algunas preparaciones de anticuerpos pueden unirse a través de sus porciones Fc a células portadoras de receptores Fc, lo que produce una tinción de fondo inespecífica alta. BD Pharmingen™ anti-CD16/CD32 de ratón purificado de rata (BD Fc Block™ de ratón) (n.º de cat. 553141 o 553142) se puede utilizar para bloquear la adherencia de anticuerpos a los receptores Fc de ratón mediada por Fc. Sin embargo, dado que el anticuerpo BD Fc Block tiene un isotipo IgG2b de rata, solo se puede usar con anticuerpos primarios generados en huéspedes de hámster sirio, hámster armenio o ratón en las placas 2 y 3. Tenga en cuenta: cuando se usa BD Fc Block, se deben elegir anticuerpos anti-Ig secundarios que no reaccionen de forma cruzada con su isotipo IgG2b de rata. • Los isotipos de Ig de hámster armenio se pueden usar como controles para los 3 anticuerpos generados en hámsteres sirios, por ejemplo, Ham IgG2, λ en la placa 3, el pocillo D4 se puede usar como un control de isotipo de Ig para el anticuerpo anti-CD28 en el pocillo H1, placa 2. Para usar este isotipo de Ig para el anticuerpo CD28 anti-ratón de hámster sirio, agregue el segundo paso de Ig anti-hámster sirio junto con el segundo paso de Ig anti-hámster armenio en el paso 14 a continuación. Análisis de citometría de flujo: • Para el análisis de citometría de flujo recomendamos procesar de 500.000 a 1.000.000 de células por pocillo para obtener mejores resultados. Sin embargo, hemos tenido éxito procesando tan solo 250.000 células por pocillo. • Para el análisis de citometría de flujo recomendamos usar un cargador de placas de cribado de alto rendimiento (HTS) de 96 pocillos. Si no se dispone de un cargador de placas, transfiera las células teñidas de las placas de 96 pocillos a tubos de fondo redondo BD Falcon™ de 12 x 75 mm (n.º de cat. 352008) para la carga manual. Reconstitución de los anticuerpos: • Después de retirar las placas del panel de cribado de marcadores de superficie celular de ratón BD Lyoplate™ de las bolsas de aluminio, centrifugue a 300 g durante 5 minutos. • Sujete la placa firmemente sobre la mesa de trabajo y retire con cuidado el sello de aluminio comenzando por un extremo y tirando a lo largo de la placa para retirar completamente el sello. Una vez retirado el sello de aluminio, todos los anticuerpos liofilizados deben reconstituirse inmediatamente. No vuelva a colocar la tapa en la placa antes de la reconstitución. • Con una pipeta multicanal, reconstituya los anticuerpos liofilizados en 110 μl de PBS estéril filtrado 1X (tamaño de poro de 0,2 µm). Esto da como resultado una solución de anticuerpos que contiene cinco pruebas (20 μl/prueba). Asegúrese de usar puntas de pipeta nuevas para cada fila para evitar la contaminación entre pocillos. Deje que los anticuerpos se reconstituyan durante cinco minutos a temperatura ambiente. • Almacene los anticuerpos reconstituidos a 4 °C hasta que las células estén preparadas para los experimentos. Los anticuerpos reconstituidos se pueden almacenar en placas con tapa a 4 °C durante al menos 10 días. • Selle los bordes de la placa (con la tapa puesta) con película de laboratorio Parafilm® M para evitar la pérdida de la solución de anticuerpos reconstituida debido a la evaporación. Cribado de células mediante citometría de flujo: (Consulte el Paso 6: se necesitan ~300 ml de tampón de tinción BD Pharmingen™ (FBS) para el cribado) 1. Prepare una suspensión de células vivas de una línea celular, tejido o cultivo tridimensional. Para líneas celulares adherentes, recomendamos utilizar una enzima suave como Accutase™ (n.º de cat. 561527) o un tampón de disociación no enzimático. 2. Lave las células en dos a cuatro volúmenes de PBS 1X. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 3. Retire cualquier grumo de células pasándolas por un colador de células BD Falcon™ de 40 o 70 μm (n.º de cat. 352340 o n.º de cat. 352350). 4. Determine la concentración celular y el número total de células. Si se disocian tejidos o un cultivo tridimensional, se recomienda tratar la suspensión de células individuales con DNasa para mitigar la agregación celular. Resuspenda las células en el medio de cultivo recomendado o en PBS 1X con calcio y magnesio y 100 unidades de DNasa/ml a una concentración de 10 millones de células por ml. Incube durante 15 minutos a temperatura ambiente. 5. Lave las células en dos a cuatro volúmenes de PBS 1X. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 6. Necesitará aproximadamente 300 ml de tampón de tinción BD Pharmingen™ (FBS) (n.º de cat. 554656) para los pasos posteriores. 7. Resuspenda las células del paso 5 en tampón de tinción BD Pharmingen. Necesitará de 110 a 220 millones de células (en un volumen total aproximado de 22 ml) para llenar los pocillos que contienen anticuerpos y los pocillos de control (500.000-1.000.000 de células por pocillo) de las tres placas. El número mínimo de células por pocillo dependerá del citómetro o de la pérdida de células durante el lavado. Hemos tenido éxito en procesar tan solo 250.000 células por pocillo. 8. Etiquete tres placas BD Falcon™ de 96 pocillos de fondo redondo (n.º de cat. 351177) como Placas 1, 2 y 3 para sus placas de muestra. 9. Con una pipeta multicanal, alícuota 100 μl de suspensión celular en los pocillos necesarios de las tres placas de 96 pocillos de fondo redondo etiquetadas. a. Si tiene un número limitado de células, puede omitir los pocillos de control de solo tampón de las placas 2 y 3. Consulte los mapas de las placas 2 y 3 para identificar los pocillos que se pueden excluir teniendo en cuenta las células sin teñir y los controles de anticuerpos secundarios. 10. Con una pipeta multicanal, pipetee hacia arriba y hacia abajo 2 o 3 veces para mezclar completamente el anticuerpo reconstituido de la primera fila de pocillos de la placa 1 del panel de detección BD Lyoplate. Después de mezclar, agregue 20 μl de la solución de anticuerpo a las células en los pocillos correspondientes de la placa de muestra 1. Cambie las puntas de la pipeta. Continúe agregando el anticuerpo reconstituido a los pocillos de muestra correspondientes para todos los pocillos restantes de cada placa de muestra. Use puntas nuevas para cada pocillo. Incube en hielo durante 20-30 minutos. 11. Para lavar, agregue 100 μl de tampón de tinción BD Pharmingen a cada pocillo. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 12. Retire el sobrenadante cuidadosamente y lave las células con 200 μl adicionales por pocillo de tampón de tinción BD Pharmingen. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 13. Durante el paso de centrifugación del lavado final, diluya los anticuerpos secundarios en tampón de tinción BD Pharmingen según la siguiente tabla: Dilución del anticuerpo secundario Concentración final (μg/ml) Volumen del anticuerpo secundario diluido (ml) Rata 1:400 1,25 15,0 Sirio 1:400 1,25 0,8 Armenio 1:800 0,60 4,0 Ratón 1:400 1,25 4,0 14. Retire el sobrenadante y aplique 100 μl del anticuerpo secundario biotinilado apropiado directamente a las células en cada pocillo que contenga el anticuerpo primario, como se muestra en los mapas de placas de diseño de matriz (páginas 9 y 10). Además, seleccione un pocillo adicional como control de reactivo secundario y terciario para cada uno de los 4 anticuerpos secundarios. Utilice la tabla a continuación como referencia. Utilice los pocillos restantes de la placa de muestra 2 o 3 que no contengan anticuerpos (pocillos de mapa de placa de color gris) para configurar los controles de solo células no teñidas. Placa Mapa de placa secundaria Color de pocillo Pocillos Control secundario Pocillo 1 Rojo rata Todos los pocillos A1 2 Rojo rata A1-A12, B1-B12, C1- C8, D1-D7 A1 2 Amarillo sirio H1-H4 H4 3 Verde armenio A1-A12, B1-B12, C1-C2, D1-D6* A1 3 Azul ratón F1-F12, G1-G10, H1- H6 H6 * Si desea utilizar controles de isotipo de Ig de hámster armenio para los 3 anticuerpos de hámster sirio, agregue el anticuerpo secundario biotinilado anti-hámster sirio junto con el anticuerpo secundario biotinilado anti-hámster armenio a los pocillos D1 (brazo IgG1, κ), D3 (brazo IgG2, κ) y D4 (brazo IgG2, λ). 15. Incubar durante 20-30 minutos en hielo en la oscuridad. 16. Para lavar, añadir 100 μl de tampón de tinción BD Pharmingen a cada pocillo. Centrifugar a 300 g durante 5 minutos. 17. Retirar el sobrenadante y lavar las células con 200 μl adicionales de tampón de tinción BD Pharmingen. Centrifugar a 300 g durante 5 minutos. 18. Retirar el sobrenadante y añadir 100 μl de estreptavidina Alexa Fluor® 647 a todos los pocillos que contengan células teñidas con los anticuerpos secundarios biotinilados (no a los pocillos seleccionados como controles de células sin teñir). Diluir la estreptavidina Alexa Fluor® 647 1:4000 (0,5 μg/ml) en 22 ml de tampón de tinción BD Pharmingen. 19. Incubar durante 20-30 minutos en hielo en la oscuridad. 20. Para lavar, añada 100 μl de tampón de tinción BD Pharmingen a cada pocillo. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 21. Retire el sobrenadante y lave las células con 200 μl adicionales de tampón de tinción BD Pharmingen. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 22. En este punto, puede que desee fijar las células antes del análisis. Para fijar, retire el sobrenadante y añada 100 μl de paraformaldehído al 4 % en PBS 1X o tampón de fijación BD Cytofix™ (n.º de cat. 554655) por pocillo e incube durante 10 minutos. Si no se requiere el paso de fijación, vaya al paso 24. 23. Lave las células dos veces con PBS 1X. Centrifugue a 300 g durante 5 minutos. 24. Retire el sobrenadante y resuspenda las células en 150 μl de tampón de tinción BD Pharmingen por pocillo. 25. Analice sus muestras con un citómetro de flujo. Recomendamos recolectar al menos 10 000 eventos por pocillo. Mientras se lee la primera placa, guarde las demás placas en hielo en la oscuridad. Cribado celular mediante bioimagen: 1. Siembre las células en un medio de cultivo adecuado a una densidad celular adecuada en una placa de imágenes BD Falcon™ de 96 pocillos (n.º de cat. 353219) y cultive las células a una densidad adecuada. Recomendamos una confluencia del 70-80 % para el cribado mediante imágenes. 2. La tinción de la superficie celular con anticuerpos de la BD Lyoplate debe realizarse en células vivas, ya que la fijación celular puede causar artefactos (falsos positivos o negativos) con algunos marcadores de la superficie celular. En los casos en que las células deban fijarse antes de la tinción, recomendamos confirmar los resultados positivos con una tinción de muestra de células vivas mediante imágenes o citometría de flujo. 3. Con una pipeta multicanal, añada 20 μl de cada anticuerpo reconstituido a los pocillos correspondientes de las placas de muestra e incube en hielo durante 20-30 minutos. Tiña las células directamente en 50 a 100 μl de medio de cultivo fresco. Si tiñe células fijadas, tiña las células en PBS 1X. 4. Lave las células dos veces en 100 μl de PBS 1X. 5. Diluya los anticuerpos secundarios biotinilados en medios de crecimiento según la siguiente tabla: Concentración final de dilución de Ab secundario (μg/ml) Volumen de Ab secundario diluido (ml) Rata 1:400 1,25 15,0 Sirio 1:400 1,25 0,8 Armenio 1:800 0,60 4,0 Ratón 1:400 1,25 4,0 6. Retire el sobrenadante y aplique 100 μl del anticuerpo secundario biotinilado apropiado directamente a cada pocillo que contenga células teñidas con el anticuerpo primario como se muestra en el mapa de placa. Además, seleccione un pocillo adicional como control de reactivo secundario más terciario para cada uno de los 4 anticuerpos secundarios. Utilice la tabla a continuación como referencia. Utilice los pocillos restantes en la placa de muestra 3 que no contienen anticuerpo (pocillos del mapa de placa de color gris) para configurar los controles de células sin teñir. Placa Mapa de placa secundaria Color de pocillo Pocillos Control secundario Pocillo 1 Rojo rata Todos los pocillos A1 2 Rojo rata A1-A12, B1-B12, C1- C8, D1-D7 A1 2 Amarillo sirio H1-H4 H4 3 Verde armenio A1-A12, B1-B12, C1-C2, D1-D6 A1 3 Azul ratón F1-F12, G1-G10, H1- H6 H6 7. Incubar durante 20-30 minutos en hielo en la oscuridad. 8. Eliminar el sobrenadante y lavar las células dos veces en 100 μl de PBS 1X. 9. Diluir la estreptavidina Alexa Fluor® 647 1:4000 (0,5 µg/ml) en 22 ml de medio de crecimiento. Agregue 100 μl de Alexa Fluor® 647 Streptavidin a todos los pocillos que contienen células teñidas con los anticuerpos secundarios biotinilados (no a los pocillos seleccionados como controles Unstained Cells Only). 10. Incube durante 20-30 minutos en hielo en la oscuridad. 11. Retire el sobrenadante y lave las células dos veces en 100 μl 1X PBS. 12. En este punto, puede que desee fijar sus células antes del análisis. Para fijar, retire el sobrenadante y agregue 100 μl de paraformaldehído al 4% en 1X PBS o BD Cytofix Fixation Buffer por pocillo e incube durante 10 minutos. Si no desea fijar sus células, vaya al paso 14. 13. Retire el fijador de los pocillos y lave el contenido del pocillo dos veces con 100 μl de 1X PBS. 14. Añada 100 μl de PBS 1X con un colorante de ácido nucleico permeable a las células, como la solución Hoechst 33342 (n.º de cat. 561908). 15. Analice las muestras en un bioimagenómetro de alto contenido. Productos complementarios sugeridos Descripción Tamaño Número de catálogo Tampón de tinción BD Pharmingen™ (FBS) 500 ml 554656 Tampón de fijación BD Cytofix™ 100 ml 554655 BD Accutase™ 100 ml 561527 Solución BD Pharmingen™ Hoechst 33342 1 mg/ml 561908 Bloque Fc BD Pharmingen™ 0,5 mg/ml 553141 o 553142 Productos relacionados Descripción Tamaño Número de catálogo Microplacas BD Falcon™ de 96 pocillos, negras/transparentes con tapa, ensayos de imágenes de alto contenido 32/caja 353219 Microplacas BD Falcon de 96 pocillos, fondo redondo con tapa, análisis de citometría de flujo 50/caja 351177 Tubo de fondo redondo BD Falcon, 12 x 75 mm 1000/caja 352008 Advertencias y precauciones El panel de detección de marcadores de superficie celular de ratón (Parte A), con Lyoplates 1, 2 y 3, contiene azida sódica. Los investigadores deben tener en cuenta que se aplican las siguientes declaraciones de riesgo y seguridad: Símbolos de peligro: Nocivo por inhalación Xn Nocivo Componentes de peligro a determinar en el etiquetado: Azida sódica Frases de riesgo: Nocivo en contacto con la piel 22 Nocivo por ingestión Frases de seguridad: 23 No respirar gases/humos/vapores/aerosoles 36 Usar ropa protectora adecuada 60 Este material y su recipiente deben eliminarse como residuos peligrosos. Mostrar menos
Avisos del producto: Avisos del producto La emisión del fluorocromo Alexa Fluor® 647 se recoge con la misma configuración del instrumento que para la aloficocianina (APC). Precaución: La azida sódica produce ácido hidrazoico altamente tóxico en condiciones ácidas. Diluya los compuestos de azida en agua corriente antes de desecharlos para evitar la acumulación de depósitos potencialmente explosivos en las tuberías. La fuente de todas las proteínas séricas proviene de mataderos inspeccionados por el USDA ubicados en los Estados Unidos. Este producto se proporciona bajo una licencia de propiedad intelectual entre Life Technologies Corporation y BD Businesses. La compra de este producto transfiere al comprador el derecho intransferible de usar la cantidad comprada del producto y los componentes del producto en la investigación realizada por el comprador (ya sea que el comprador sea una entidad académica o con fines de lucro). El comprador no puede vender o transferir de otra manera (a) este producto (b) sus componentes o (c) materiales hechos con este producto o sus componentes a un tercero o de otra manera usar este producto o sus componentes o materiales hechos con este producto o sus componentes para fines comerciales. "Fines Comerciales" se refiere a cualquier actividad realizada por una parte a cambio de una remuneración, que puede incluir, entre otras: (1) el uso del producto o sus componentes en la fabricación; (2) el uso del producto o sus componentes para proporcionar un servicio, información o datos; (3) el uso del producto o sus componentes con fines terapéuticos, diagnósticos o profilácticos; o (4) la reventa del producto o sus componentes, independientemente de que dicho producto o sus componentes se revendan para su uso en investigación. Para obtener información sobre la adquisición de una licencia de este producto para cualquier otro uso, comuníquese con Life Technologies Corporation, Cell Analysis Business Unit Business Development, 29851 Willow Creek Road, Eugene, OR 97402, EE. UU., Tel.: (541) 465-8300. Fax: (541) 335-0504. Accutase es una marca registrada de Innovative Cell Technologies, Inc. Alexa Fluor® es una marca registrada de Life Technologies Corporation. Consulte http://regdocs.bd.com para acceder a las fichas de datos de seguridad (FDS). Mostrar menos
Descripción: Cantidad/Tamaño: Número de pieza: ID de EntrezGene
N/D : 5.0 : N/D : N/D